LAPORAN PENELITIAN
PENELITIAN PENELITI MUDA (LITMUD) UNPAD
FORMULASI SEDIAAN EMULSI BUAH MERAH
(PANDANUS CONOIDEUS LAM.)
SEBAGAI PRODUK ANTIOKSIDAN ALAMI
Oleh:
Ketua : Ellin Febrina, S.Si.
Anggota I Drs. Dolih Gozali, M.S.
Anggota II Taofik Rusdiana, S.Si., M.Si.
Dibiayai oeh Dana DIPA Universitas Padjadjaran
Tahun Anggaran 2007
Nomor SPK : 269/J06.14/LP/PL/2007
Tanggal
: 3 April 2007
LEMBAGA PENELITIAN
UNIVERSITAS PADJADJARAN
Fakultas : Farmasi
Universitas Padjadjaran
Bulan November Tahun 2007
LEMBAR IDENTITAS DAN PENGESAHAN
LAPORAN AKHIR PENELITIAN PENELITI MUDA (LITMUD) UNPAD
SUMBER DANA DIPA UNPAD
TAHUN ANGGARAN 2007
1. a. Judul penelitian
b. Macam penelitian
c. Kategori
2. Ketua Peneliti
a. Nama lengkap dan Gelar
b. Jenis kelamin
c. Pangkat/Gol/NIP
d. Jabatan fungsional
e. Fakultas/Jurusan
f. Bidang ilmu yang diteliti
: Formulasi Sediaan Emulsi Sari Buah Merah
(Pandanus conoideus Lam.) Sebagai Produk
Antioksidan Alami
: ( ) Dasar
( ) Terapan (X) Pengembangan
: I
:
: Ellin Febrina, S.Si.
: P
: Penata Muda/IIIa/132314207
: Asisten Ahli
: Farmasi
: Farmasetika
3. Jumlah Tim Peneliti
: 3 orang
4. Lokasi penelitian
: Laboratorium Teknologi Farmasi, Laboratorium
Farmasi Fisik dan Laboratorium Mikrobiologi,
Fakulta Farmasi, Universitas Padjadjaran.
5. Jangka waktu penelitian
: 8 bulan mulai dari tanggal 3 April 2007 sampai
dengan tanggal 15 Nopember 2007
6. Jumlah biaya penelitian
: Rp. 5.000.000,- (Lima juta rupiah)
Mengetahui:
Dekan Fakultas: Farmasi
Universitas Padjadjaran
Bandung, 15 November 2007
Ketua Peneliti
Prof. Dr. Anas Subarnas, M.Sc.
NIP.131479508
Ellin Febrina, S.Si.
NIP. 132314207
Menyetujui:
Ketua Lembaga Penelitian
Universitas Padjadjaran,
Prof. Oekan S. Abdoellah, M.A., Ph.D
NIP. 130937900
KATA PENGANTAR
Puji dan syukur penulis panjatkan ke hadirat Allah SWT karena atas
rahmat dan karunia-Nya penulis dapat menyelesaikan laporan penelitian ini.
Penelitian yang berjudul “Formulasi Sediaan Emulsi Minyak Buah Merah
(Pandanus conoideus Lam.) Sebagai Produk Antioksidan Alami” ini merupakan
penelitian peneliti muda (Litmud) yang didanai oleh DIPA Unpad tahun Anggaran
2007. Laporan ini memaparkan hasil penelitian mengenai formulasi sediaan
emulsi minyak buah merah dengan menggunakan emulgator alam yang sesuai
berdasarkan hasil orientasi, hasil aktivitas antioksidan, dan hasil uji stabilitas
sediaan selama penyimpanan dalam jangka waktu tertentu
Pada kesempatan ini penulis ingin menyampaikan terima kasih yang
sebesar-besarnya kepada:
1. Ketua Lembaga Penelitian, Universitas Padjadjaran.
2. Dekan Fakultas Farmasi, Universitas Padjadjaran.
3. Kepala Laboratorium Teknologi Farmasi, Fakultas Farmasi, Universitas
Padjadjaran.
4. Kepala Laboratorium Farmasi Fisik, Fakultas Farmasi, Universitas
Padjadjaran.
5. Kepala
Laboratorium
Mikrobiologi,
Fakultas
Farmasi,
Universitas
Padjadjaran.
6. Seluruh pihak yang telah membantu penulis menyelesaikan penelitian dan
laporan penelitian ini.
Penulis menyadari bahwa laporan hasil penelitian ini masih memiliki
banyak kekurangan. Oleh karena itu, saran serta kritik yang membangun sangat
penulis harapkan.
Semoga penelitian ini dapat bermanfaat bagi perkembangan ilmu
pengetahuan khususnya dalam ilmu kefarmasian.
Jatinangor, November 2007
Penulis
DAFTAR ISI
Halaman
ABSTRAK..................................................................................................
i
ABSTRACT..................................................................................................
ii
KATA PENGANTAR...............................................................................
iii
DAFTAR ISI.............................................................................................
iv
DAFTAR TABEL.....................................................................................
vii
DAFTAR GAMBAR.................................................................................
viii
DAFTAR LAMPIRAN.............................................................................
ix
BAB I
PENDAHULUAN.......................................................................
1
1.1 Latar Belakang ....................................................................
2
1.2 Identifikasi Masalah ............................................................
2
1.3 Tujuan Penelitian ................................................................
3
1.4 Kegunaan Penelitian............................................................
3
1.5 Metode Penelitian ...............................................................
3
1.6 Waktu dan Tempat Penelitian..............................................
4
BAB II TINJAUAN PUSTAKA............................................................
5
2.1
Buah Merah........................................................................
5
2.1.1 Klasifikasi ................................................................
5
2.1.2 Habitat......................................................................
5
2.1.3 Morfologi .................................................................
5
2.1.4 Kandungan Kimia ....................................................
6
2.1.5 Manfaat ....................................................................
7
2.1.6 Minyak Buah Merah ................................................
8
2.2 Antioksidan ........................................................................
9
2.2.1 Definisi Antioksidan .................................................
9
2.2.2 Mekanisme Kerja Antioksidan .................................
9
2.2.3 DPPH (1,1 Difenil-2-Pikril Hidrazil).........................
10
2.3 Sistem Dispersi ...................................................................
10
2.4 Emulsi .................................................................................
11
2.4.1 Pengertian Emulsi .....................................................
11
2.4.2 Jenis Emulsi ..............................................................
11
iv
Halaman
2.4.3 Tujuan Emulsi .................................................................
12
2.4.4 Teori Emulsifikasi .........................................................
13
2.4.5 Penggunaan Emulsi .......................................................
13
2.4.6 Pembuatan Emulsi .........................................................
13
2.4.7 Zat Pengemulsi ..............................................................
16
2.4.8 Kestabilan Sediaan Emulsi ...........................................
16
2.4.9 Evaluasi Sediaan Emulsi...............................................
18
Sifat Aliran .............................................................................
18
2.5.1 Sistem Aliran Newton ...................................................
18
2.5.2 Sistem Aliran non-Newton ...........................................
19
METODE PENELITIAN ............................................................
22
3.1 Alat .........................................................................................
22
3.2 Bahan.......................................................................................
22
3.3 Metode Penelitian ....................................................................
22
3.3.1 Penyiapan Bahan............................................................
22
2.5
BAB III
3.3.2 Penentuan Sifat Fisika dan Kimia Minyak Buah
Merah ..............................................................................
22
3.3.3 Penentuan Aktivitas Antioksidan Minyak Buah
Merah dengan Metode Radical Scavanging
Activity (RSA) dengan DPPH..........................................
23
3.3.4 Praformulasi dan Formulasi Sediaan Emulsi ..................
24
3.3.5 Evaluasi Sediaan Emulsi ………..…………………......
27
3.3.6 Analisis Kualitatif Kandungan Kimia Minyak Buah
BAB IV
Merah dalam Sediaan Emulsi..........................................
30
3.3.7 Uji Kesukaan (hedonic test)............................................
30
3.3.8 Analisis Data ..................................................................
31
HASIL DAN PEMBAHASAN.....................................................
32
4.1 Hasil Penentuan Sifat Fisika dan Kimia Minyak Buah
Merah .....................................................................................
v
32
Halaman
4.1.1 Hasil Pemeriksaan Organoleptik...............................
32
4.1.2 Hasil Penentuan Bobot Jenis, pH, Viskositas,
dan Kadar Air............................................................
4.2
4.3
Hasil Penentuan Aktivitas Antioksidan Minyak Buah
Merah ................................................................................
33
Hasil Praformulasi dan Formulasi Sediaan Emulsi...........
34
4.3.1 Hasil Praformulasi ..................................................
34
4.3.2 Hasil Formulasi Sediaan Emulsi .............................
35
4.4 Hasil Evaluasi Sediaan Emulsi …………………...........…
37
4.4.1 Hasil Pengamatan Organoleptis……………………
37
4.4.2 Hasil Pengamatan Rasio Pemisahan Fase………….
38
4.4.3 Hasil Pengukuran Viskositas ……………………...
38
4.4.4 Hasil Pengukuran pH ……………………………...
39
4.4.5 Hasil Uji Redispersibilitas ………………………...
40
4.4.6 Hasil Uji Tipe Emulsi ……………………………..
41
4.4.7 Hasil Pengamatan Mikroskopik …………………..
42
4.4.8 Hasil Penentuan Sifat Aliran ....................................
43
4.4.9 HasilUji Mikrobiologi .............................................
44
4.5
4.6
BAB V
32
Hasil Analisis Kualitatif Kandungan Kimia Minyak Buah
Merah dalam Sediaan Emulsi ............................................
45
Hasil Uji Kesukaan (Hedonic Test)....................................
45
KESIMPULAN DAN SARAN ..................................................
48
5.1
48
5.2
Kesimpulan .......................................................................
Saran ..................................................................................
48
DAFTAR PUSTAKA ........................................................................................
49
LAMPIRAN ......................................................................................................
51
vi
ABSTRAK
FORMULASI SEDIAAN EMULSI MINYAK BUAH MERAH
(PANDANUS CONOIDEUS LAM.)
SEBAGAI PRODUK ANTIOKSIDAN ALAMI
Ellin Febrina, Dolih Gozali, Taofik Rusdiana
Telah dilakukan penelitian mengenai formulasi sediaan emulsi minyak buah
merah (Pandanus conoideus Lam.) dengan gom arab sebagai emulgator alam
yang terpilih berdasarkan hasil orientasi basis emulsi telah dilakukan. Formula
emulsi dibuat dengan variasi konsentrasi gom arab 10, 12,5, dan 15%. Hasil uji
stabilitas yang meliputi pengamatan secara organoleptis, rasio pemisahan fase,
viskositas, redispersibilitas, uji tipe emulsi, diameter globul minyak, sifat aliran,
pengukuran pH, dan uji mikrobiologi menunjukkan bahwa semua formula relatif
stabil selama 56 hari penyimpanan. Formula dengan gom arab 15% yang
merupakan formula yang paling stabil dilihat dari uji stabilitas, selanjutnya
divariasikan penambahan sukrosa dan asam sitratnya dan digunakan untuk uji
kesukaan. Hasil uji kesukaan et rhadap parameter rasa dan kekentalan
menunjukkan bahwa formula B dengan penambahan 12,5% sukrosa dan 0,25%
asam sitrat adalah formula yang paling disukai rasanya, sedangkan formula A
dengan penambahan 17,5% sukrosa dan 0,15% asam sitrat paling disukai
kekentalannya. Pengujian aktivitas antioksidan minyak buah merah dengan
metode radical scavanging activity (RSA) dengan DPPH menunjukkan bahwa
konsentrasi minyak buah merah mempunyai daya peredaman 50% (EC50) sebesar
0,203%.
Kata kunci: minyak buah merah, emulsi, aktivitas antioksidan, metode radical
scavanging activity (RSA), DPPH.
ABSTRACT
FORMULATION OF EMULSION CONTAINING RED FRUIT OIL
(PANDANUS CONOIDEUS LAM.)
AS A NATURAL ANTIOXIDANT PRODUCT
Ellin Febrina, Dolih Gozali, Taofik Rusdiana
The research about formulation of emulsion containing red fruit oil (Pandanus
conoideus Lam.) with arabic gum that choosed as natural emulsifying agent
based on orientation has been carried out. The emulsion formula has been made
using various concentration of arabic gum at 10, 12.5, and 15%. Stability test
containing observation of organoleptic, separated phase ratio, viscosity,
redisphersibility, type of emulsion, oil globules diameter, type of rheology, pH
changes, and microbiology test showed that all formulas relative in stable for 56
days storage period. Formula that containing 15% arabic gum is the most stable
formula based on stability test and it used for hedonic test by various sucrose and
citric acid added. The results of the hedonic test with taste and viscosity
parameters showed that formula B with 12.5% sucrose and 0.25% citric acid was
the most ideal formula in taste, and formula A with 17.5% sucrose and 0.15%
citric acid was preferred for their viscosity. The evaluation of antioxidant activity
of red fruit oil by radical scavanging activity (RSA) method showed that the 50%
inhibition consentration (EC50) was 0.203%.
Keywords: red fruit oil, emulsion, antioxidant activity, radical scavanging activity
(RSA) method, DPPH.
BAB I
PENDAHULUAN
1.1
Latar Belakang
Obat tradisional sejak jaman dahulu memainkan peranan penting dalam
menjaga kesehatan, mempertahankan stamina, dan mengobati penyakit. Oleh
karena itu, obat tradisional masih berakar kuat dalam kehidupan masyarakat
hingga kini (Soedibyo, 1998). Obat tradisional tersebut salah satunya berasal dari
tanaman.
Buah merah (Pandanus conoideus Lam) sebagai salah satu tanaman obat
memiliki
prospek
yang
baik
untuk
dikembangkan.
Salah
satu
alasan
pengembangannya adalah kandungan bahan aktifnya yang beragam dan cukup
tinggi sehingga mampu mencegah dan mengobati berbagai penyakit. Buah merah
termasuk tanaman endemik. Secara umum habitat asal tanaman ini adalah hutan
sekunder dengan kondisi tanah lembab. Tanaman ini ditemukan tumbuh liar di
wilayah Papua dan Papua New Guinea. Di wilayah Papua, tanaman buah merah
ditemukan tumbuh di daerah dengan ketinggian antara 2-2.300 m di atas
permukaan laut (dpl). Buah merah termasuk jenis tanaman pandan-pandanan
(Pandanus). Pada dasarnya terdapat lebih dari 30 jenis atau kultivar buah merah di
Papua. Namun, secara garis besar diketahui ada empat kultivar yang banyak
dikembangkan karena memiliki nilai ekonomis, yakni kultivar merah panjang,
merah pendek, coklat, dan kuning. Warna, bentuk, dan ukuran buah masingmasing jenis itu berbeda-beda. Kultivar merah panjang memiliki buah berbentuk
silindris, ujung tumpul, dan pangkal menjantung. Panjang buah mencapai 96-102
cm dengan diameter 15-20 cm. Bobot buah mencapai 7-8 kg. Warna buah merah
bata saat muda dan merah terang saat matang. Buah dibungkus daun pelindung
berbentuk melancip dengan duri pada tulang utama sepanjang 8/10 bagian dari
ujung. Buah merah mengandung zat-zat gizi bermanfaat atau senyawa aktif dalam
kadar tinggi, diantaranya betakaroten, tokoferol, serta asam lemak seperti asam
oleat, asam linoleat, asam linolenat, dan asam dekanoat. Jika dibandingkan
dengan buah merah jenis lain (coklat dan kuning), buah yang berwarna merah
1
2
lebih baik karena umumnya kandungan senyawa aktifnya relatif lebih tinggi,
terutama kandungan karoten, betakaroten, dan tokoferol (Budi, 2005; Paimin,
2005).
Emulsi adalah sediaan berupa campuran terdiri dari dua fase cairan dalam
sistem dispersi; fase cairan yang satu terdispersi sangat halus dalam fase cairan
lainnya, umumnya dimantapkan oleh zat pengemulsi (emulgator) (Anonim, 1978).
Di bidang farmasi dua cairan yang tidak saling bercampur tersebut biasanya
berupa minyak dan air. Ketika minyak dan air dikocok bersamaan, terjadi
pencampuran, namun bila pengocokan dihentikan akan terjadi pemisahan yang
cepat menjadi dua lapisan cairan. Untuk menghasilkan emulsi yang stabil,
ditambahkan zat ketiga, yaitu emulgator (White, 1964).
Semua zat pengemulsi bekerja dengan membentuk film di sekeliling butirbutir tetesan yang terdispersi. Film ini bekerja mencegah koalesen dan terpisahnya
cairan dispers sebagai fase terpisah (Anief, 1999).
Antioksidan didefinisikan sebagai senyawa yang dapat memperlambat dan
mencegah proses oksidasi. Senyawa ini dapat menstabilkan senyawa radikal bebas
yaitu dengan cara bereaksi dengan elektron bebas pada kulit terluar dari radikal
bebas sehingga terbentuk senyawa yang relatif stabil (Jawanmardi, 2003).
Berdasarkan latar belakang di atas penulis ingin meneliti bagaimana
membuat suatu sediaan emulsi minyak buah merah sebagai antioksidan yang baik
dan stabil.
1.2
Identifikasi Masalah
Berdasarkan latar belakang yang telah diuraikan di atas maka dapat
diidentifikasi masalah sebagai berikut:
1. Bagaimana aktivitas antioksidan minyak buah merah?
2. Emulgator alam apa yang paling baik untuk membuat sediaan emulsi
minyak buah merah yang stabil?
3. Bagaimana cara membuat formula sediaan emulsi minyak buah merah
yang baik dan layak dikonsumsi?
4. Formula manakah yang paling disukai?
3
1.3
Tujuan Penelitian
Penelitian ini bertujuan untuk menentukan aktivitas antioksidan minyak
buah merah dan formula yang tepat dari sediaan emulsi minyak buah merah
(Pandanus conoideus Lam) yang dapat diterima oleh konsumen dan stabil secara
fisik selama penyimpanan dalam jangka waktu tertentu.
1.4
Kegunaan Penelitian
Hasil penelitian ini diharapkan dapat memberikan informasi mengenai
aktivitas antioksidan minyak buah merah dan formulasi yang baik sediaan emulsi
yang mengandung minyak buah merah sebagai salah satu usaha pengembangan
jenis sediaan minyak buah merah untuk meningkatkan nilai manfaat dari buah
merah.
1.5
Metode Penelitian
Tahapan kerja yang akan dilakukan dalam penelitian ini adalah sebagai
berikut:
1. Penyiapan bahan
2. Penentuan sifat fisika dan kimia minyak buah merah
3. Penentuan aktivitas antioksidan minyak buah merah dengan metode
radical scavanging activity (RSA) dengan DPPH
4. Praformulasi dan formulasi sediaan emulsi
5. Evaluasi sediaan emulsi meliputi:
a. Pengamatan organoleptis
b. Pengamatan rasio pemisahan fase
c. Pengukuran viskositas
d. Pengukuran pH
e. Uji redispersibilitas
f. Uji tipe emulsi
g. Pengamatan mikroskopik
h. Penentuan sifat aliran
i.
Uji mikrobiologi
4
6. Analisis kualitatif zat aktif minyak buah merah dalam sediaan emulsi
dengan menggunakan kromatografi lapis tipis
7. Uji kesukaan (hedonic test)
8. Analisis data
1.6
Waktu dan Tempat Penelitian
Penelitian ini dilakukan dari bulan April hingga November 2007 di
Laboratorium Teknologi Resep, Laboratorium Farmasi Fisika, Laboratorium
Mikrobiologi, Fakultas Farmasi,
Universitas
Padjadjaran,
Jatinangor dan
Laboratorium Kimia Bahan Alam dan Lingkungan, Jurusan Kimia, Fakultas
Matermatika dan Ilmu Pengetahuan Alam, Universitas Padjadjaran, Bandung.
BAB II
TINJAUAN PUSTAKA
2.1
Buah Merah
2.1.1
Klasifikasi
Buah merah termasuk jenis tanaman pandan-pandanan (Pandanus).
Diperkirakan ada sekitar 600 jenis tanaman yang tergolong dalam genus
Pandanus, salah satunya adalah buah merah. Klasifikasi buah merah adalah
sebagai berikut:
Divisi
: Spermatophyta
Kelas
: Angiospermae
Subkelas
: Monocotyledonae
Ordo
: Pandanales
Famili
: Pandanaceae
Genus
: Pandanus
Spesies
: Pandanus conoideus Lam. (Budi dan Paimin, 2005).
2.1.2
Habitat
Buah merah termasuk tanaman endemik. Secara umum habitat asal
tanaman ini adalah hutan sekunder dengan kondisi tanah lembab. Tanaman ini
ditemukan tumbuh liar di wilayah Papua dan Papua New Guinea. Di wilayah
Papua, tanaman buah merah ditemukan tumbuh di daerah dengan ketinggian
antara 2-2.300 m di atas permukaan laut (dpl). Ini berarti bahwa tanaman buah
merah dapat tumbuh di mana saja di wilayah Papua, mulai dataran rendah hingga
dataran tinggi. Menurut Heyne (1987), buah merah juga bisa ditemukan di bagian
utara Maluku yang menyebar dari daerah pantai hingga daerah pegunungan (Budi
dan Paimin, 2005).
2.1.3
Morfologi
Pada dasarnya terdapat lebih dari 30 jenis atau kultivar buah merah di
Papua. Namun, secara garis besar diketahui ada empat kultivar yang banyak
dikembangkan karena memiliki nilai ekonomis, yakni kultivar merah panjang,
merah pendek, cokelat, dan kuning. Warna, bentuk, dan ukuran buah masing-
6
7
masing jenis itu berbeda-beda. Kultivar merah panjang memiliki buah berbentuk
silindris, ujung tumpul, dan pangkal menjantung. Panjang buah mencapai 96-102
cm dengan diameter 15-20 cm. Bobot buah mencapai 7-8 kg. Warna buah merah
bata saat muda dan merah terang saat matang. Buah dibungkus daun pelindung
berbentuk melancip dengan duri pada tulang utama sepanjang 8/10 bagian dari
ujung (Budi dan Paimin, 2005).
2.1.4
Kandungan Kimia
Buah merah mengandung zat-zat gizi bermanfaat atau senyawa aktif dalam
kadar tinggi, diantaranya betakaroten, tokoferol, serta asam lemak seperti asam
oleat, asam linoleat, asam linolenat, dan asam dekanoat (Tabel 2.1 dan 2.2). Jika
dibandingkan dengan buah merah jenis lain (coklat dan kuning), buah yang
berwarna merah lebih baik karena umumnya kandungan senyawa aktifnya relatif
lebih tinggi, terutama kandungan karoten, betakaroten, dan tokoferol (Budi dan
Paimin, 2005).
Tabel 2.1 Kandungan Senyawa Aktif dalam Minyak Buah Merah
Senyawa Aktif
Kandungan
Total karotenoid
12.000 ppm
Total tokoferol
11.000 ppm
Betakaroten
700 ppm
Alfa-tokoferol
500 ppm
Asam oleat
58%
Asam linoleat
8,8%
Asam linolenat
7,8%
Asam dekanoat
2,0%
8
Tabel 2.2 Komposisi Zat Gizi per 100 gram Buah Merah
Senyawa Aktif
Kandungan
Energi
394 kalori
Protein
3.300 mg
Lemak
28.100 mg
Serat
20.900 mg
Kalsium
54.000 mg
Fosfor
30 mg
Besi
2,44 mg
Vitamin B1
0,9 mg
Vitamin C
25,7 mg
Nialin
1,8 mg
Air
34,9%
(Budi dan Paimin, 2005)
2.1.5
Manfaat
Secara garis besar, buah merah mempunyai manfaat sebagai berikut, yaitu:
1. Sumber pangan
Sebagai sumber pangan, buah merah biasa diolah menjadi minyak dan
saus, sebagai campuran bahan pangan lain seperti ubi-ubian dan sagu,
sebagai pengawet daging dan pengawet sagu.
2. Sumber pewarna alami
Buah merah dapat dimanfaatkan sebagai bahan pewarna makanan,
kerajinan dan kosmetik.
3. Bahan kerajinan
Daun, batang, dan akar buah merah dapat dijadikan sebagai bahan
kerajinan seperti alat pengikat, tikar, dan pembungkus rokok.
4. Bahan obat
Buah merah adalah salah satu tanaman obat yang memiliki prospek yang
baik untuk dikembangkan. Salah satu alasan pengembangannya adalah
9
kandungan bahan aktifnya yang beragam dan cukup tinggi sehingga
mampu mencegah dan mengobati berbagai penyakit. Secara empiris, buah
merah terbukti dapat menyembuhkan berbagai penyakit seperti kanker,
jantung, tuberkulosis, gangguan saluran pernafasan serta penyakit mata
dan kulit (Budi dan Paimin, 2005).
2.1.6
Minyak Buah Merah
Minyak buah merah diperoleh dari pemanasan buah merah yang telah
matang. Cara membuat minyak buah merah adalah sebagai berikut:
1. Buah dipilih yang benar-benar matang dengan tanda kulit buah berwarna
merah terang dan jarak antar tonjolan semakin jarang.
2. Buah dibelah, dikeluarkan empulurnya, lalu dipotong-potong dan dicuci
dengan air hingga bersih.
3. Daging buah dikukus menggunakan api sedang sekitar 1-2 jam. Setelah
matang (lunak), diangkat dan didinginkan.
4. Daging buah merah ditambah sedikit air, lalu diremas dan diperas hingga
daging buah terpisah dari biji. Kemudian, ditambah air lagi hingga
ketinggian 5 cm di atas permukaan bahan. Remas kembali hingga biji
benar-benar putih dan bersih dari daging sehingga diperoleh sari buah
merah yang menyerupai santan.
5. Sari buah merah disaring dengan untuk memisahkan bijinya.
6. Hasil saringan buah merah dimasak kembali dalam dengan api sedang
selama 5-6 jam sambil diaduk-aduk. Bila sudah muncul minyak berwarna
merah kehitaman di permukaan, api dimatikan sambil terus diaduk selama
10 menit agar cepat dingin.
7. Angkat dan diamkan selama satu hari hingga terbentuk tiga lapisan, yaitu
air di lapisan bawah, ampas di lapisan tengah, dan minyak di lapisan atas,
Lapisan minyak diambil.
8. Minyak dipindahkan ke wadah lain, lalu diamkan selama ± 3 jam hingga
minyak, ampas, dan air benar-benar terpisah. Bila sudah tidak ada lagi air
dan ampas maka proses pengolahan berakhir (Budi dan Paimin, 2005).
10
2.2
Antioksidan
2.2.1
Definisi Antioksidan
Antioksidan didefinisikan sebagai senyawa yang dapat memperlambat dan
mencegah proses oksidasi. Senyawa ini dapat menstabilkan senyawa radikal bebas
yaitu dengan cara bereaksi dengan elektron bebas pada kulit terluar dari radikal
bebas sehingga terbentuk senyawa yang relatif stabil. Berdasarkan sumbernya
antioksidan dibagi dalam dua kelompok, yaitu:
1) Antioksidan sintetik (antioksidan yang diperoleh dari hasil reaksi kimia),
contohnya adalah Butil Hidroksi Anisol (BHA), Butil Hidroksi Toluen
(BHT), propil galat, dan Tert-Butil Hidoksi Quinon (TBHQ).
2) Antioksidan alami ( antioksidan hasil ekstraksi bahan alami), contohnya
adalah flavonoid, beta karoten, tokoferol (vitamin E), dan asam askorbat
(vitamin C).
Sedangkan berdasarkan jenisnya, antioksidan dibagi menjadi:
1) Antioksidan enzim, contohnya superoksida dismutase (SOD), katalase,
dan glutation peroksidase (GSH.Prx).
2) Antioksidan vitamin, contohnya beta karoten (pro vitamin A), tokoferol
(vitamin E), dan asam askorbat (vitamin C) (Sofia, 2003).
2.2.2
Mekanisme Kerja Antioksidan
Sesuai mekanismenya, antioksidan memiliki dua fungsi.
1) Fungsi utama, yaitu sebagai pemberi atom hidrogen atau biasa disebut
sebagai antioksidan primer. Penambahan
hidrogen tersebut dapat
menghalangi reaksi oksidasi pada tahap inisiasi maupun propagasi.
Inisiasi
: R. + AH
Propagasi
: ROO. + AH
RH + A.
ROOH + A.
2) Fungsi sekunder, yaitu memperlambat laju autooksidasi dengan berbagai
mekanisme di luar mekanisme pemutusan rantai autooksidasi dengan
pengubahan radikal lipid ke bentuk yang lebih stabil.
11
Senyawa radikal bebas dapat menimbulkan kerusakan kulit dengan dua cara,
yaitu:
1) Memecah protein utama dari kolagen elastin yang berperan dalam menjaga
elastisitas kulit. Jika kolagen dan elastin pecah lebih cepat dibandingkan
pembentukannya, maka kulit akan menjadi kering, lebih tipis, dan
berkeriput.
2) Menghancurkan asam lemak esensial yang berperan dalam pembentukan
‘barier’ yang memberikan kelembaban pada kulit.
2.2.3
DPPH (1,1 Difenil-2-Pikril Hidrazil)
Gambar 2.1. Struktur Kimia DPPH
Senyawa DPPH (1,1-Difenil-2-Pikril Hidrazil) adalah senyawa radikal
bebas berbentuk prisma yang relatif stabil dan memiliki warna ungu tua dengan
panjang gelombang maksimum 517 nm. DPPH memiliki berat molekul (BM)
394,3 dan titik leleh pada 132-133 o C. Senyawa ini bersifat polar karena larut
dalam etanol dan metanol. Senyawa semakin populer sebagai zat untuk menguji
kehandalan senyawa yang memiliki efek sebagai antioksidan.
2.3
Sistem Dispersi
Sistem dispersi dapat didefinisikan sebagai suatu sistem dimana salah satu
zat (fase terdispersi/fase dalam) pada sistem tersebut tersebar (terdispersi) dalam
zat lainnya (medium dispersi/fase kontinyu/fase luar).
Ukuran zat yang terdispersi dapat berkisar dari partikel yang berukuran
atom dan molekul sampai dengan partikel yang berukuran milimeter. Oleh karena
12
itu, penggolongan sistem dispersi adalah berdasarkan garis tengah partikel ratarata zat yang terdispersi.
Tabel 2.3 Penggolongan Sistem Dispersi Menurut Ukuran Partikel
Golongan
Dispersi
Molekular
Rentang
Ukuran
Partikel
< 1,0 nm
Dispersi
Koloidal
0,5 µm - 1,0
nm
Dispersi
Kasar
> 0,5 µm
2.4
Emulsi
2.4.1
Pengertian Emulsi
Karakteristik Sistem
Contoh
Partikel tak tampak dalam mikroskop Molekul
elektron; lolos melewati ultrafilter dan oksigen, ionmembran
semipermeabel;
difusi ion
biasa,
berlangsung cepat.
glukosa.
Partikel tak teramati dalam mikroskop Sol
perak
elektron; lolos melewati kertas saring, koloidal,
tapi tidak lolos melewati membran polimer alam
semipermeabel;
berdifusi
sangat dan sintetik.
lambat.
Partikel tampak di bawah mikroskop Butiran pasir,
biasa; tidak lolos elewati kertas saring emulsi
dan
normal
atau
terdialisis
melalui suspensi
membran semipermeabel; partikel tida farmasetis, sel
dapat berdifusi.
darah merah
(Martin et al., 1993)
Emulsi adalah sediaan berupa campuran yang terdiri dari dua fase cairan
dalam sistem dispersi dimana fase cairan yang satu terdispersi sangat halus dan
merata dalam fase cairan lainnya, umumnya dimantapkan oleh zat pengemulsi
(emulgator). Fase cairan terdispersi disebut fase dalam, sedangkan fase cairan
pembawanya disebut fase luar (Anonim, 1978).
2.4.2
Jenis Emulsi
Berdasarkan jenisnya, emulsi dibagi dalam 2 golongan, yaitu:
1. Emulsi jenis m/a
Emulsi yang terbentuk jika fase dalam berupa minyak dan fase luarnya air,
disebut emulsi minyak dalam air (m/a).
2. Emulsi jenis a/m
13
Emulsi yang terbentuk jika fase dalamnya air dan fase luar berupa minyak,
disebut emulsi air dalam minyak (a/m) (Anonim, 1978).
Menentukan jenis emulsi dapat dilakukan dengan beberapa cara, yaitu:
1. Metode konduktivitas listrik
Aliran listrik dihantarkan oleh emulsi m/a karena adanya zat-zat ionik
dalam air.
2. Metode fluoresensi
Minyak dapat berfluoresensi di bawah sinar UV, emulsi m/a menunjukkan
pola titik-titik, sedangkan emulsi a/m berfluoresensi seluruhnya (Lachman
et al., 1994).
3. Metode pewarnaan
Jenis emulsi ditentukan dengan penambahan zat warna tertentu, dilihat di
bawah mikroskop. Misalnya, bila emulsi ditambah larutan sudan III (larut
dalam minyak) terjadi warna merah maka jenis emulsi adalah a/m,
sedangkan bila ditambah larutan metilen blue (larut dalam air) terjadi
warna biru maka tipe emulsi adalah m/a.
4. Metode pengenceran fase
Bila ditetesi dengan air emulsi segera dapat diencerkan, maka jenis emulsi
adalah emulsi m/a, sedangkan bila tidak, jenis emulsi adalah emulsi a/m.
Hal ini dapat juga dilihat di bawah mikroskop (Anief, 1999).
Pemberian lemak-lemak atau minyak-minyak secara peroral, baik sebagai
obat yang diberikan tersendiri atau sebagai pembawa untuk obat-obat yang larut
dalam minyak dapat diformulasikan sebagai emulsi minyak dalam air (m/a).
Emulsi untuk pemberian intravena dapat dalam bentuk m/a, sedangkan untuk
pemberian intramuskular dapat diformulasikan dalam bentuk a/m jika obat yang
larut air dibutuhkan untuk depot terapi. Untuk penggunaan luar dapat digunakan
tipe m/a atau a/m (Aulton, 1988).
2.4.3
Tujuan Emulsi
Tujuan emulsi adalah untuk membuat suatu sediaan yang stabil dan rata
dari dua cairan yang tidak dapat bercampur, untuk pemberian obat yang
mempunyai rasa lebih enak, serta memudahkan absorpsi obat (Ansel, 1989).
14
2.4.4
Teori Emulsifikasi
Beberapa
teori
emulsifikasi
berikut
menjelaskan
bagaimana
zat
pengemulsi bekerja dalam menjaga stabilitas dari dua zat yang tidak saling
bercampur:
a.
Teori tegangan permukaan
Emulsi terjadi bila ditambahkan suatu zat yang dapat menurunkan tegangan
antarmuka di antara dua cairan yang tidak et rcampurkan, sehingga
mengurangi tolak-menolak antara kedua cairan tersebut dan mengurangi
tarik-menarik antarmolekul dari masing-masing cairan, atau menyebabkan
cairan menjadi tetesan-tetesan yang lebih kecil.
b.
Teori orientasi bentuk baji
Emulsi terjadi bila ditambahkan suatu zat yang terdiri dari bagian polar dan
non polar. Karena kedua cairan yang akan dibuat emulsi berbeda pula
muatannya, maka zat ini akan menempatkan dirinya sesuai dengan
kepolarannya.
c.
Teori film plastik
Emulsi terjadi bila ditambahkan zat yang dapat mengelilingi antarmuka
kedua cairan, mengelilingi tetesan fase dalam sebagai suatu lapisan tipis atau
film yang diadsorpsi pada permukaan dari tetesan tersebut. Semakin kuat
dan semakin lunak lapisan tersebut maka emulsi yang terbentuk akan
semakin stabil (Anief, 1999; Ansel, 1989).
2.4.5
Penggunaan Emulsi
Berdasarkan penggunaannya, emulsi dibagi dalam 2 golongan, yaitu:
1. Emulsi untuk pemakaian dalam
Emulsi untuk pemakaian dalam meliputi per oral dan injeksi intravena.
2. Emulsi untuk pemakaian luar
Emulsi untuk pemakaian luar digunakan pada kulit atau membran mukosa,
seperti linimen, losion, dan krim (Anief, 1999).
2.4.6
Pembuatan Emulsi
1. Metode Pembuatan
Emulsi dapat dibuat dengan metode-metode di bawah ini:
15
a. Metode Gom Kering (metode kontinental /metode 4:2:1)
Metode ini khusus untuk emulsi dengan zat pengemulsi gom kering. Basis
emulsi (corpus emuls) dibuat dengan 4 bagian minyak, 2 bagian air dan 1
bagian gom, lalu sisa air dan bahan lain ditambahkan kemudian. Caranya,
minyak dan gom dicampur, dua bagian air kemudian ditambahkan
sekaligus dan campuran tersebut digerus dengan segera dan dengan cepat
serta terus-menerus hingga terdengar bunyi “lengket”, bahan lainnya
ditambahkan kemudian dengan pengadukan.
b. Metode Gom Basah (metode inggris)
Metode ini digunakan untuk membuat emulsi dengan musilago atau gom
yang dilarutkan sebagai zat pengemulsi. Dalam metode ini digunakan
proporsi minyak, air dan gom yang sama seperti pada metode gom kering.
Caranya, dibuat musilago kental dengan sedikit air, minyak ditambahkan
sedikit demi sedikit dengan diaduk cepat. Bila emulsi terlalu kental, air
ditambahkan lagi sedikit agar mudah diaduk dan bila semua minyak sudah
masuk, ditambahkan air sampai volume yang dikehendaki.
c. Metode Botol
Metode ini digunakan untuk membuat emulsi dari minyak-minyak
menguap yang juga mempunyai viskositas rendah. Caranya, serbuk gom
arab dimasukkan ke dalam suatu botol kering, ditambahkan dua bagian air
kemudian campuran tersebut dikocok dengan kuat dalam wadah tertutup.
Minyak ditambahkan sedikit demi sedikit sambil terus mengocok
campuran tersebut setiap kali ditambahkan air. Jika semua air telah
ditambahkan, basis emulsi yang terbentuk bisa diencerkan sampai
mencapai volume yang dikehendaki (Anief, 1999; Ansel, 1989).
2. Pemilihan Zat-zat Tambahan
Zat-zat tambahan yang umumnya ditambahkan pada formula suatu emulsi
diantaranya:
a. Antioksidan
Antioksidan adalah zat yang berfungsi untuk mencegah oksidasi dari fase
minyak yang terdapat dalam suatu sediaan emulsi. Contoh zat yang biasa
16
digunakan sebagai antioksidan adalah BHA (butylated hydroxyanisole),
BHT (butylated hydroxytoluene) dan tokoferol.
b. Humektan
Humektan adalah zat yang ditambahkan untuk mengurangi penguapan air
baik dari kemasan produk ketika tutupnya terbuka atau dari permukaan
kulit pada saat digunakan. Humektan ditambahkan pada emulsi untuk
pemakaian luar. Contoh zat yang biasa digunakan sebagai humektan
diantaranya propilenglikol, gliserol dan sorbitol (Aulton, 1988).
c. Pengawet
Pengawet digunakan untuk mencegah pertumbuhan mikroorganisme.
Suatu pengawet harus efektif terhadap kontaminasi dari mikroorganisme
patogen dan cukup dapat melindungi emulsi selama digunakan pasien.
Pengawet harus mempunyai toksisitas rendah, stabil terhadap pemanasan
dan selama penyimpanan, tercampurkan secara kimia, memiliki rasa, bau,
dan warna yang lemah. Contoh pengawet diantaranya asam benzoat dan
turunannya, metil paraben (nipagin), dan propil paraben (nipasol),
benzalkonium klorida, fenil merkuri nitrat (Anief, 1999; Ansel, 1989).
d. Pemberi rasa
Pemberi rasa digunakan untuk memberi rasa enak sekaligus pewangi ke
dalam suatu sediaan emulsi oral. Contoh pemberi rasa diantaranya minyak
kayu manis, minyak jeruk, minyak permen, vanili. Pemanis digunakan
untuk memberikan rasa manis pada sediaan emulsi oral. Contoh pemanis
diantaranya dekstrosa, sukrosa, natrium sakarin, sorbitol, gliserin.
e. Pewarna
Zat pewarna digunakan untuk mewarnai sediaan farmasi untuk tujuan
estetika dan sebagai pembantu sensori untuk pemberi rasa yang digunakan.
f. Pendapar
Zat pendapar digunakan untuk menahan perubahan pH pada pengenceran
dan penambahan asam atau basa. Contoh pendapar diantaranya kalium
metafosfat, kalium dihirogen fosfat, dan natrium asetat (Ansel, 1989).
17
2.4.7
Zat Pengemulsi
1. Syarat pemilihan
Pemilihan zat pengemulsi sangat penting dalam menentukan keberhasilan
pembuatan suatu emulsi yang stabil. Agar berguna dalam preparat farmasi, zat
pengemulsi harus mempunyai kualitas tertentu, diantaranya
harus dapat
dicampurkan dengan bahan formulatif lainnya, tidak mengganggu stabilitas dari
zat terapeutik, tidak toksik dalam jumlah yang digunakan, serta mempunyai bau,
rasa, dan warna yang lemah (Ansel, 1989; Gennaro, 1990).
2. Penggolongan
Zat pengemulsi dapat digolongkan berdasarkan sumber sebagai berikut:
a. Golongan karbohidrat, seperti gom, tragakan, agar dan pektin.
b. Golongan protein, seperti gelatin, kuning telur, dan kasein.
c. Golongan alkohol berbobot molekul tinggi, seperti stearil alkohol, setil
alkohol, gliseril monostearat, kolesterol, dan turunan kolesterol.
d. Golongan surfaktan (sintetik), bisa yang bersifat anionik, kationik, dan
nonionik.
e. Golongan zat padat terbagi halus, seperti bentonit, magnesium hidroksida,
dan alumunium hidroksida (Ansel, 1989).
2.4.8
Kestabilan Sediaan Emulsi
1. Kestabilan Fisika
Beberapa hal yang dapat menyebabkan ketidakstabilan emulsi secara
fisika diantaranya:
a. Creaming
b. Creaming adalah terpisahnya emulsi menjadi dua lapisan, dimana lapisan
yang satu mengandung butir-butir tetesan (fase terdispersi) lebih banyak
daripada lapisan yang lain dibandingkan keadaan emulsi awal. Walaupun
masih boleh, terbentuknya cream tidak baik dilihat dari nilai estetika
sediaan, sehingga sebisa mungkin harus dicegah. Beberapa hal yang dapat
mencegah pembentukan cream yaitu:
1) Memperkecil ukuran tetes-tetes cairan yang terdispersi
2) Meningkatkan viskositas fase luar/fase kontinyu
18
3) Memperkecil perbedaan kerapatan antara kedua fase cairan
4) Mengontrol konsentrasi fase terdispersi
c. Laju creaming dinyatakan dalam hukum Stokes sebagai berikut:
i. d2 (ρ-ρ0) g
v=
ii. 18 η0
dimana v adalah laju creaming (cm/detik), d adalah diameter globul fase
terdispersi (cm), ρ adalah kerapatan fase terdispersi (g/mL), ρ0 adalah
kerapatan medium dispersi (g/mL), g adalah percepatan gravitasi (m/s),
dan η0 adalah viskositas medium dispersi (Poise).
d. Koalesensi (breaking)
Koalesensi adalah peristiwa penggabungan globul-globul minyak sebagai
fase dalam menjadi lebih besar yang menyebabkan emulsi tidak terbentuk
kembali (pecah). Hal ini dikarenakan koalesensi bersifat ireversibel.
e. Inversi
Inversi adalah peristiwa berubahnya jenis emulsi dari m/a menjadi a/m
atau sebaliknya (Aulton, 1988; Gennaro, 1990).
2. Kestabilan Kimia
Dalam suatu sistem emulsi, zat aktif serta zat-zat tambahan yang
digunakan harus tercampurkan secara kimia. Sebagai contoh, penambahan alkohol
dapat menyebabkan emulsi dengan koloid hidrofilik mengalami pengendapan
sedangkan perubahan pH yang drastis dapat mengakibatkan pecahnya emulsi.
3.
Kestabilan Biologi
Kontaminasi emulsi oleh mikroorganisme dapat mempengaruhi sifat
fisikokimia sediaan, seperti perubahan warna dan bau, perubahan pH, hidrolisis
lemak dan minyak, serta pecahnya emulsi. Oleh karena itu, perlu penambahan zat
pengawet antimikroba untuk mencegah pertumbuhan mikroorganisme (Aulton,
1988; Gennaro, 1990).
19
2.4.9 Evaluasi Sediaan Emulsi
Evaluasi sediaan emulsi dilakukan untuk mengetahui kestabilan dari suatu
sediaan emulsi pada penyimpanan. Evalu asi ini dapat dilakukan melalu i
pengamatan secara organoleptis (rasa, bau, warna, konsistensi), pengamatan
secara fisika (rasio pemisahan fase, viskositas, redispersibilitas, uji tipe emulsi,
ukuran globul fase dalam, sifat aliran), pengamatan secara kimia (pengukuran
pH), secara biologi (angka cemaran mikroba).
2.5
Sifat Aliran (reologi)
Reologi adalah ilmu yang menggambarkan aliran cairan dan deformasi
dari padatan. Reologi dari suatu produk tertentu yang dapat berkisar dari
konsistensi cair ke semisolid sampai ke padatan, dapat mempengaruhi penerimaan
pasien, stabilitas fisika, serta availabilitas biologis.
Penggolongan bahan menurut tipe aliran dan deformasi dibedakan dalam
dua tipe aliran yaitu Sistem Aliran Newton dan Sistem Aliran Non-Newton
(Martin et al., 1993).
2.5.1
Sistem Aliran Newton
Sistem aliran Newton adalah sistem aliran yang mengikuti hukum Newton.
Pada sistem ini, cairan dianggap sebagai sebuah balok yang terdiri dari lapisan
molekul-molekul paralel. Lapisan dasar dianggap menempel pada tempatnya. Jika
bidang cairan paling atas bergerak dengan suatu kecepatan konstan, setiap lapisan
dibawahnya akan bergerak dengan suatu kecepatan yang berbanding lurus dengan
jarak dari lapisan dasar yang diam.
Perbedaan kecepatan (dv) antara dua bidang cairan dipisahkan oleh suatu
jarak yang sangat kecil (dr) adalah “perbedaan kecepatan” atau rate of shear,
dirumuskan dengan dv/dr. Untuk menimbulkan aliran ini diperlukan gaya per
satuan luas (shearing stress), yaaitu F’/A. Newton menemukan bahwa makin
besar viskositas suatu cairan, akan makin besar pula gaya per satuan luas
(shearing stress) yang diperlukan untuk menghasilkan suatu rate of shear tertentu.
20
Oleh karena itu, rate of shear harus berbanding lurus dengan shearing stress,
dirumuskan sebagai berikut:
F’
dv
=
A
η
dr
Dimana η adalah koefisien viskositas, biasanya dinyatakan hanya sebagai
Viskositas
Kecepatan Geser
viskositas saja.
Te ka n a n G e se r
Kecepatan Geser
Gambar 2.2 Kurva Sistem Aliran Newton (Martin et al., 1993)
Zat-zat yang mengikuti sistem aliran Newton adalah beberapa cairan yang
umumnya digunakan dalam bidang farmasi seperti kloroform, etanol, gliserin,
minyak jarak dan minyak zaitun.
2.5.2
Sistem Aliran Non-Newton
Sistem aliran non-Newton adalah sistem aliran yang tidak mengikuti
hukum Newton. Zat-zat yang tidak mengikuti hukum Newton diantaranya
dispersi heterogen cairan dan padatan seperti larutan koloid, emulsi, suspensi,
salep serta produk-produk yang serupa. Sistem aliran non-Newton dibagi menjadi
empat jenis aliran, yaitu:
1. Aliran Plastik
Benda yang menghasilkan aliran plastik disebut benda Bingham (Bingham
body). Kurva aliran plastik tidak melewati titik nol. Jika bagian garis lurus
diekstrapolasikan maka akan memotong sumbu tekanan geser pada titik
tertentu yang disebut yield value. Benda-benda dengan aliran plastik tidak
21
akan mulai mengalir sebelum tekanan gesernya melewati yield value.
Adanya yield value disebabkan kontak antara partikel yang berdekatan
harus dipecahkan terlebih dahulu agar dapat mengalir. Pada tekanan
dibawah yield value zat mempunyai sifat sebagai bahan elastik. Aliran
Viskositas
Kecepatan Geser
plastik dikaitkan dengan adanya partikel terflokulasi dalam suspensi pekat.
Yield value
Te ka n a n G e s e r
Kecepatan Geser
Gambar 2.3 Kurva Aliran Plastik (Martin et al., 1993)
2. Aliran Pseudoplastik
Sebagian besar produk farmasetis memperlihatkan aliran pseudoplastik.
Sebagai patokan umum, aliran pseudoplastik ditunjukkan oleh polimerpolimer dalam larutan, misalnya dispersi cair gom dan tragakan. Kurva
aliran
pseudoplastik
berawal dari titik
nol
(atau
paling sedikit
mendekatinya pada kecepatan geser yang rendah). Pada kurva aliran ini
tidak terdapat kurva yang lurus. Oleh karena itu sukar untuk menyatakan
viskositas
zat
pseudoplastik
dengan
suatu
harga. Viskositas
Viskositas
Kecepatan Geser
pseudoplastik berkurang jika kecepatan geser naik.
Te kan an G ese r
Kecepatan Geser
Gambar 2.4 Kurva Aliran Pseudoplastik (Martin et al., 1993)
zat
22
3. Aliran Dilatan
Suspensi tertentu dengan dengan persentase zat padat yang tinggi
menunjukkan kenaikan viskositas dengan naiknya laju geser. Sistem
tersebut volumenya bertambah jika diberi geseran. Oleh karena itu disebut
Viskositas
Kecepatan Geser
dilatan. Aliran dilatan merupakan kebalikan dari aliran pseudoplastik.
Te ka n a n G e se r
Kecepatan Geser
Gambar 2.5 Kurva Aliran Dilatan (Martin et al., 1993)
4. Tiksotropik
Tiksotropik adalah pemulihan keadaan secara isotermal dan komparatif
lambat dari zat yang konsistensinya hilang akibat geseran, yang terjadi
pada saat didiamkan. Tiksotropik hanya terjadi pada sistem geser-cair
Kecepatan Geser
(bahan plastik dan pseudoplastik).
Te k a n a n G e se r
Gambar 2.6 Kurva Tiksotropik (Martin et al., 1993)
23
BAB III
METODE PENELITIAN
3.1
Alat
Alat-alat yang digunakan pada penelitian ini yaitu alat-alat gelas yang
biasa
dipergunakan
di
Laboratorium
Teknologi
Farmasi,
Laboratorium
Farmasetika, Laboratorium Farmasi Fisik serta Laboratorium Mikrobiologi,
mortir dan stamper, timbangan analitis (Acculab VI -200), viskometer (Brookfield
model RV), pH-meter digital (Metrohm), mikroskop, rotatotester, plat silika GF
254, dan chamber glass.
3.2
Bahan
Bahan-bahan yang digunakan dalam penelitian ini yaitu minyak buah
merah (PJ Mahkota Rizki), gom arab, natrium alginat, gelatin, tragakan (Kimia
Farma), madu murni (Perum Perhutani), sorbitol (Bratachem), natrium benzoat,
asam sitrat, natrium sitrat (Seger Chemical), pelarut-pelarut (eter minyak bumi,
etil asetat, propanol), dan nutrient agar.
3.3
Metode Penelitian
3.3.1
Penyiapan Bahan
Bahan-bahan yang akan digunakan untuk membuat sediaan emulsi yang
diperoleh dari berbagai sumber dikumpulkan dan disiapkan.
3.3.2
Penentuan Sifat Fisika dan Kimia Minyak Buah Merah
1. Pemeriksaan Organoleptis
Pemeriksaan organoleptis yang dilakukan meliputi pengamatan bentuk,
konsistensi, warna, rasa serta bau dari sampel minyak buah merah yang digunakan
dalam penelitian.
2. Penentuan Bobot Jenis
Bobot jenis dari sampel minyak buah merah ditententukan dengan
menggunakan piknometer. Piknometer kosong ditimbang, lalu diisi dengan
akuades, ditimbang kembali, diperoleh masa air sehingga dapat dihitung massa
27
28
jenis air. Piknometer kemudian diisi dengan minyak buah merah, ditimbang,
diperoleh massa minyak buah merah, kemudian bobot jenis minyak buah merah
dihitung sebagai berikut:
Bobot jenis (ρ) =
Bobot minyak buah merah
x Bobot jenis air
Bobot air
3. Penentuan pH
Pengukuran pH dilakukan dengan mencelupkan elektroda dari pH-meter
digital ke dalam sampel, yang sebelumnya telah dikalibrasi pada larutan buffer,
kemudian pH-meter dinyalakan dan ditunggu sampai layar pada pH-meter
menunjukkan angka yang stabil.
4. Penentuan Viskositas
Pengukuran viskositas dilakukan dengan menggunakan viskometer
Brookfield Model RV dengan kecepatan geser dan nomor spindel yang sesuai,
kemudian hasil pembacaan dikalikan dengan faktor pencari.
5. Penetapan Kadar Air
Kadar air dihitung dengan menggunakan metode gravimetri berdasarkan
SNI 01-3555-1998 tentang cara uji minyak dan lemak. Mula-mula ditimbang
sebanyak ±10 gram minyak buah merah, kemudian dipanaskan dalam oven
bersuhu 105ºC selama 3 jam, lalu dihitung bobotnya, diulangi setiap 1 jam hingga
diperoleh bobot yang konstan sebagai bobot akhir. Kadar air dihitung dengan
rumus sebagai berikut:
Berat air yang hilang
Kadar air =
x 100 %
Berat minyak
3.3.3
Penentuan aktivitas antioksidan minyak buah merah dengan metode
radical scavanging activity (RSA) dengan DPPH
1. Pembuatan larutan uji
Dibuat larutan uji dalam berbagai konsentrasi dalam pelarut metanol, yaitu
minyak buah merah dengan konsentrasi 0,02; 0,04; 0,08; 0,16; dan 0,32%
dalam pelarut metanol.
29
2. Pembuatan larutan DPPH
Larutan 1,1-Diphenyl-2-picrylhydrazyl (DPPH, Mr = 395,34) dengan
konsentrasi akhir 2,0x10-4 M (dibuat larutan stok pada konsentrasi 1,0x10-3
M). Larutan dijaga pada suhu rendah, terlindungi dari cahaya untuk segera
digunakan.
3. Penetapan absorban blangko DPPH
Larutan DPPH (1 ml), ditambahkan metanol 4 ml, dihomogenkan, dan diamati
absorbansinya pada tiga titik yaitu λ 499, 519,dan 539 nm.
A A
2
AHIT = Amax - 1
2
4. Pengukuran absorbansi % inhibisi senyawa uji
Larutan uji dalam berbagai konsentrasi (0,02%; 0,04%; 0,08%; 0,16%; dan
0,32%)
ditambahkan dengan
larutan DPPH
(1 ml),
dihomogenkan,
diinkubasikan selama 30 menit kemudian dibaca absorbansinya pada λ 499,
519, 539 nm. Sebagai blangko digunakan larutan induk DPPH.
ADPPH Auji
% Inhibisi =
x 100%
ADPPH
5. Pengukuran IC50
Harga IC50 dihitung dari kurva regresi linier antara % penghambatan serapan
dengan ln konsentrasi ekstrak (larutan uji).
3.3.4 Praformulasi dan Formulasi Sediaan Emulsi
1. Praformulasi
Untuk menentukan emulgator alam yang cocok dalam pembuatan sediaan
emulsi minyak buah merah, dibuat suatu basis emulsi (corpus emuls) dengan
menggunakan beberapa emulgator yang biasa digunakan diantaranya gom arab,
tragakan, madu, gelatin, natrium alginat dan lalu diamati kestabilannya selama
tujuh hari. Emulgator yang menghasilkan basis emulsi paling baik digunakan
untuk membuat formula selanjutnya.
30
Tabel 3.1 Formula Basis Emulsi
Konsentrasi Bahan Penyusun Basis Emulsi (%)
Bahan
MBM
Gom arab
Tragakan
Madu
Gelatin
Na alginat
Air sampai
1
33,3
10*
100
2
33,3
1**
100
3
4
5
33,3
33,3
33,3
20
1*
1*
100
100
100
(*Rowe, 2003; **Van Duin, 1947)
Cara Pembuatan:
Formula 1 dibuat dengan menggunakan metode Gom Basah (4 bagian minyak:2
bagian gom:1 bagian air). Di dalam mortir minyak bersama gom diaduk sampai
homogen, kemudian ditambahkan air sekaligus sambil diaduk cepat sampai
terdengar bunyi “lengket” lalu air ditambahkan sampai jumlah yang ditentukan
(Ansel, 1989).
Formula 2 dibuat dengan cara berikut. Tragakan digerus dengan air yang 20 kali
banyaknya, setelah terbentuk musilago minyak dan air ditambahkan sedikit demi
sedikit secara bergantian sampai jumlah yang ditentukan (Van Duin, 1947).
Formula 3 dibuat sebagai berikut. Madu dituang ke dalam mortir, ditambahkan air
kedalamnya lalu diaduk hingga homogen, ditambahkan minyak lalu terakhir
ditambahkan air sampai jumlah yang ditentukan (Van Duin, 1947).
Formula 4 dan 5 dibuat dengan cara berikut. Gelatin atau natrium alginat masingmasing dikembangkan dalam air panas yang banyaknya 20 kali, lalu digerus
sampai homogen, setelah dingin ditambahkan minyak dan diaduk kembali sampai
homogen, terakhir ditambahkan air sampai jumlah yang ditentukan.
Masing-masing formula diamati selama seminggu meliputi warna, bau serta
konsistensinya.
31
2. Formulasi Sediaan Emulsi
Hasil pengamatan menunjukkan bahwa formula basis emulsi dengan
menggunakan emulgator gom arab merupakan basis emulsi terbaik di antara
keempat basis emulsi yang lain. Oleh karena itu, gom arab dipilih untuk membuat
formula emulsi selanjutnya.
Tabel 3.2 Formula Sediaan Emulsi
Bahan
Minyak Buah Merah
Gom arab
Sorbitol
Sukrosa
Asam sitrat
Narium sitrat
Natrium benzoat
Strawberry flavour
Air sampai
Konsentrasi Bahan Penyusun Sediaan
E0
E1
E2
33,3
33,3
33,3
0
10
12,5
25
25
25
15
15
15
0,25
0,25
0,25
0,25
0,25
0,25
0,1
0,1
0,1
qs
qs
qs
100
100
100
(%)
E3
33,3
15
25
15
0,25
0,25
0,1
qs
100
Cara pembuatan: dengan menggunakan metode gom basah (4 bagian minyak:2
bagian gom:1 bagian air) yaitu mula-mula minyak buah merah dituangkan ke
dalam mortir, kemudian gom arab didispersikan hingga merata ke dalam minyak,
diaduk hingga homogen, lalu ditambahkan air sekaligus sambil diaduk dengan
segera dan cepat sampai terdengar bunyi “lengket” yang menandakan corpus
emuls telah terbentuk. Asam sitrat, natrium sitrat serta natrium benzoat masingmasing dilarutkan dalam air secukupnya, lalu secara perlahan-lahan bersama zatzat lainnya dimasukkan ke dalam corpus emuls yang telah terbentuk, terakhir air
ditambahkan sampai jumlah yang ditentukan.
Formula di atas merupakan formula untuk uji stabilitas. Oleh karena itu
hanya dibuat variasi dari jumlah emulgatornya saja. Formula terbaik yang
diperoleh berdasarkan uji stabilitas kemudian akan digunakan untuk uji kesukaan
(hedonic test) dengan variasi perbandingan pemanis serta asam sitrat.
32
3.3.5
Evaluasi Sediaan Emulsi
Evaluasi sediaan emulsi dilakukan untuk mengetahui kestabilan dari
sediaan emulsi yang telah dibuat. Evaluasi ini meliputi pengamatan sediaan
selama 56 hari pada penyimpanan, yaitu hari ke-1, 3, 7, 14, 21, 28, 35, 42, 49, dan
56. Pengamatan sediaan meliputi:
1. Pengamatan Organoleptis
Pengamatan organoleptis dilakukan dengan mengamati bentuk, rasa, bau,
warna, serta konsistensi dari sediaan pembanding (E0) dan sediaan uji (E1, E2,
E3) pada hari ke-1, 3, 7, 14, 21, 28, 35, 42, 49, dan 56.
2. Pengamatan Rasio Pemisahan Fase
Pengamatan rasio pemisahan fase dilakukan dengan membandingkan
tinggi fase air (H1) dengan tinggi emulsi mula-mula (H0) dari sediaan
pembanding (E0) dan sediaan uji (E1, E2, E3) pada hari ke-1, 3, 7, 14, 21, 28, 35,
42, 49, dan 56.
3. Pengukuran Viskositas
Pengukuran
viskositas
sediaan
dilakukan
dengan
menggunakan
viskometer Brookfield model RV dengan kecepatan geser dan nomor spindel yang
sesuai pada hari ke-1, 3, 7, 14, 21, 28, 35, 42, 49, dan 56, kemudian hasil
pembacaan dikalikan dengan faktor pencari, yaitu:
Tabel 3.3 Tabel Faktor Pencari (Viskometer Brookfield Model RV)
Kecepatan
(rpm)
0,5
1
2
2,5
4
5
10
20
50
100
1
200
100
50
40
25
20
10
5
2
1
No. Spindel
2
3
2000
800
1000
400
500
200
400
160
250
100
200
80
100
40
50
20
20
8
10
4
4
4000
2000
1000
800
500
400
200
100
40
20
33
4. Pengukuran pH
Pengukuran pH dilakukan dengan mencelupkan elektroda dari pH-meter
digital ke dalam sampel, yang sebelumnya telah dikalibrasi pada larutan buffer,
kemudian pH-meter dinyalakan dan ditunggu sampai layar pada pH-meter
menunjukkan angka yang stabil. Pengukuran dilakukan terhadap masing-masing
sediaan pada hari ke-1, 3, 7, 14, 21, 28, 35, 42, 49, dan 56.
5. Uji Redispersibilitas
Uji redispersibilitas dilakukan dengan cara mengocok masing-masing
sediaan pembanding (E0) dan sediaan uji (E1, E2, E3), kemudian dihitung jumlah
pengocokan yang diperlukan sampai sediaan emulsi terdispersi kembali.
Pengujian dilakukan hari ke-1, 3, 7, 14, 21, 28, 35, 42, 49, dan 56.
6. Uji Tipe Emulsi
Uji tipe emulsi dilakukan dengan menggunakan salah satu metode yaitu
metode pengenceran, caranya dengan menambahkan sejumlah air dan minyak
pada sediaan dan diamati apakah sediaan dapat tercampur dengan air atau dengan
minyak, sehingga dapat diketahui apakah terjadi perubahan tipe emulsi dari m/a
menjadi a/m selama penyimpanan. Pengujian dilakukan pada hari ke-1 dan 56.
7. Pengamatan Mikroskopik
Pengamatan mikroskopik dilakukan dengan cara mengukur diameter dan
distribusi frekuensi globul minyak dari sediaan pembanding (E0) dan sediaan uji
(E1, E2, E3) pada hari ke-1 dan 56. Pengukuran dilakukan di bawah mikroskop
dengan menggunakan dengan mikrometer yang telah ditentukan ukuran tiap
kotaknya (dikalibrasi) dengan menggunakan hemositometer.
Diameter globul diukur dengan menggunakan rumus yang diturunkan dari
persamaan Edmunson berikut:
( ∑nd pf )
d rata-rata =
1/p
∑nd f
dimana d adalah garis tengah ekivalen, n adalah jumlah partikel dalam satu
rentang ukuran, p adalah indeks ukuran dan f adalah indeks frekuensi.
34
Oleh karena parameter yang dipakai adalah jumlah globul dan diameter
globul, maka rumus di atas menjadi:
∑nd
∑n
dimana n adalah jumlah globul yang diamati dan d adalah interval dari rentang
ukuran globul.
8. Penentuan Sifat Aliran
Penentuan sifat aliran dilakukan dengan menggunakan viskometer
Brookfield Model RV dengan variasi kecepatan geser dan spindel tertentu yang
sesuai, kemudian dibuat kurva/grafik viskositas terhadap kecepatan geser, atau
kecepatan geser terhadap tekanan geser, sehingga dapat diketahui apakah terjadi
perubahan sifat aliran pada sediaan emulsi selama penyimpanan. Pengamatan
dilakukan pada hari ke-1 dan 56.
9. Uji Mikrobiologi
Uji mikrobiologi dilakukan untuk mengetahui angka cemaran mikroba
yang mungkin mengkontaminasi sediaan selama penyimpanan. Uji ini dilakukan
dengan menentukan Angka Lempeng Total (ALT) yaitu penentuan jumlah koloni
dari pertumbuhan bakteri mesofil aerob setelah sampel diinkubasikan dalam
media pembenihan yang cocok selama 24-48 jam pada suhu 35±1ºC. Pengujian
dilakukan pada hari ke-1 dan ke-56. Cara pengujiannya adalah sebagai berikut:
a)
Penyiapan alat-alat dan bahan yang telah disterilkan.
b)
Homogenisasi sampel, yaitu dengan memipet 1 mL sampel yang
dimasukkan ke dalam wadah lain, yang telah berisi 9 mL larutan pengencer
sehingga diperoleh pengenceran 1:10. Sampel hasil pengenceran ini
kemudian digunakan untuk pengenceran lain apabila diperlukan.
c)
Sampel hasil pengenceran dipipet sebanyak 1 mL dan dimasukkan ke dalam
cawan petri steril. Dilakukan sebanyak dua kali (duplo).
d)
Sebanyak 12-15 mL nutrient agar yang telah dicairkan dituang ke dalam
masing-masing cawan kemudian cawan digoyangkan perlahan-lahan sampai
sampel tercampur rata dengan nutrient agar, lalu dibiarkan sampai menjadi
padat.
35
e)
Blanko dibuat dengan mencampur air pengencer dengan nutrient agar untuk
masing-masing sampel yang diperiksa.
f)
Cawan berisi sampel dimasukkan ke dalam inkubator dalam posisi terbalik
dan diinkubasikan selama 24-48 jam pada suhu 35±1ºC.
g)
Pertumbuhan koloni dicatat pada setiap cawan yang mengandung 25-250
koloni setelah 48 jam.
h)
Angka lempeng total dihitung dalam 1 gram atau 1 mL sampel dengan
mengalikan jumlah rata-rata koloni pada cawan dengan faktor pengenceran
yang sesuai (SNI 19-2897-1992; Anonim, 1979).
3.3.6
Analisis Kualitatif Kandungan Kimia Minyak Buah Merah dalam
Sediaan Emulsi
Analisis kualitatif ini dilakukan dengan menggunakan Kromatografi Lapis
Tipis (KLT) dengan menggunakan plat silika gel GF 254 dan pengembang yang
cocok. Caranya, minyak buah merah dan emulsi ditotolkan pada plat (yang
sebelumnya telah diberi tanda batas atas dan bawah) menggunakan pipa kapiler,
kemudian plat diletakkan dalam chamber glass yang telah diisi larutan
pengembang sedalam ±0,5 cm hingga pengembang naik sampai batas atas yang
telah ditentukan, lalu ditentukan Rf (perbandingan jarak yang tempuh senyawa
dengan jarak yang ditempuh pengembang) dari bercak yang terbentuk (Basset,
1994; Gritter 1991) . Adanya harga Rf dan ukuran yang sama dari bercak yang
terbentuk menunjukkan tidak adanya perubahan kandungan zat aktif dari minyak
buah merah setelah diformulasikan sebagai emulsi.
3.3.7
Uji Kesukaan (Hedonic Test)
Uji hedonik dilakukan untuk mengetahui formula mana yang paling
disukai. Pengujian dilakukan terhadap 30 orang panelis yang diambil secara acak.
Para panelis diminta untuk mencicipi ketiga formula emulsi serta minyak buah
merah sebagai pembanding, kemudian diminta tanggapannya dalam skala
numerik satu sampai lima, dimana satu menunjukkan respon sangat tidak suka
sedangkan lima menunjukkan respon sangat suka.
36
3.3.8
Analisis Data
Analisis data dilakukan secara statistik menggunakan Analisis Varians
dengan Metode Desain Blok Lengkap Acak (DBLA) subsampling model tetap
untuk uji stabilitas dan Desain Acak Sempurna (DAS) untuk uji hedonik.
BAB IV
HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1
Hasil Penentuan Sifat Fisika dan Kimia Minyak Buah Merah
4.1.1
Hasil Pemeriksaan Organoleptis
Minyak buah merah berbentuk cairan encer berwarna merah pekat,
mempunyai rasa tawar serta bau yang khas. Saat diminum minyak buah merah
mempunyai rasa khas minyak nabati serta after taste yang tidak menyenangkan
sebab cairan berbentuk minyak ini tidak larut air sehingga tetap meninggalkan bekas
minyak di lidah yang menimbulkan rasa tidak nyaman bagi penggunanya.
4.1.2
Hasil Penentuan Bobot Jenis, pH, Viskositas dan Kadar Air
Hasil penentuan bobot jenis, pH, viskositas dan kadar air minyak buah merah
dapat dilihat pada Tabel 4.1.
Tabel 4.1 Hasil Penentuan Bobot Jenis, pH, Viskositas dan Kadar Air
No
Parameter
Hasil
1
Bobot Jenis
0,9585 g/mL
2
pH
5,24
3
Viskositas
7,75 cps
4
Kadar Air
0,36 %
Minyak buah merah mempunyai kadar air yang sangat kecil seperti terlihat
dalam Tabel 4.1 yaitu hanya 0,36%. Air merupakan media yang baik untuk
pertumbuhan mikroba. Oleh karena itu, kadar air yang minim ini menyebabkan
minyak buah merah cenderung aman dari pertumbuhan mikroba yang tinggi serta
cemaran mikroba yang berbahaya (Lampiran 1). Selain itu, pada umumnya mikroba
hidup pada lingkungan yang mempunyai pH 6,5-7,5 (Pelczar and Chan, 1986),
sedangkan minyak buah merah mempunyai pH asam yaitu 5,24. Minyak buah merah
juga mempunyai konsistensi yang sangat encer dilihat dari hasil penentuan
viskositasnya yaitu 7,75 sentipoise (cps). Hal ini dikarenakan sebagian besar
39
40
kandungan minyak buah merah adalah asam-asam lemak tidak jenuh yang berbentuk
cair pada suhu ruangan.
4.2
Hasil Penentuan Aktivitas Antioksidan Minyak Buah Merah
Hasil penentuan aktivitas antioksidan minyak buah merah dapat dilihat pada
Tabel 4.2, Tabel 4.3, dan Gambar 4.1. Pada penelitian ini konsentrasi minyak buah
merah yang mempunyai daya peredaman 50% (EC50) adalah 0,203%.
Tabel 4.2 Hasil Penentuan Aktivitas Antioksidan Minyak Buah Merah
Bahan uji
Konsentrasi (%)
Serapan
% Peredaman
1.962
-
0.32
0.45
77.06
0.16
1.131
42.35
0.08
1.507
23.19
0.04
1.826
6.93
0.02
1.939
1.17
Blangko
Buah Merah
Tabel 4.3 Persamaan Regresi Linear dan EC50 Minyak Buah Merah
Persamaan regresi linear
EC50 (%)
y = 250,41x - 0,9104; R2 = 0,9882
0,203
90
y = 250.41x - 0.9104
R2 = 0.9882
80
70
60
50
%
P
eredam
an
40
30
20
10
0
0
0.05
0.1
0.15
0.2
0.25
0.3
0.35
Konsentrasi minyak buah merah (%)
Gambar 4.1 Kurva regresi linear persentase peredaman DPPH oleh minyak buah merah
41
4.3 Hasil Praformulasi dan Formulasi Sediaan Emulsi
4.3.1 Hasil Praformulasi
Hasil pengamatan basis emulsi selama 7 hari dapat dilihat pada Tabel 4.4
berikut.
Tabel 4.4 Hasil Pengamatan Basis Emulsi Selama 7 Hari
Hasil Pengamatan Selama 7 Hari
Formula
Warna
1
oranye
2
merah pekat
3
4
merah pekat
kecoklatan
merah pekat
5
merah pekat
Bau
Konsistensi
creaming, mudah didispersikan
kembali
memisah, agak sukar
khas
didispersikan kembali
khas, sedikit memisah, sukar didispersikan
berbau asam kembali dengan pengocokan biasa
memisah, sukar didispersikan
khas
kembali
memisah, sukar didispersikan
khas
kembali
khas
Keterangan:
Formula 1 : Basis gom arab
Formula 2 : Basis tragakan
Formula 3 : Basis madu
Formula 4 : Basis gelatin
Formula 5 : Basis natrium alginat
Basis emulsi dengan emulgator madu, gelatin dan natrium alginat
mempunyai konsistensi yang buruk karena pemisahannya sangat cepat (sejak hari
pertama pengamatan sudah terjadi pemisahan) dan membutuhkan pengocokan yang
lama agar terdispersi kembali. Selain itu, basis emulsi dengan emulgator madu
menjadi semakin encer pada penyimpanan 7 hari serta membentuk gas CO2. Hal ini
kemungkinan disebabkan enzim diastase yang terdapat dalam madu bereaksi dengan
minyak buah merah. Basis emulsi dengan emulgator tragakan menghasilkan
konsistensi yang lebih baik walaupun tetap memisah namun masih lebih mudah
didispersikan daripada basis gelatin dan natrium alginat.
Basis emulsi dengan emulgator gom arab merupakan basis yang terbaik di
antara basis yang lain dengan warna dan konsistensi yang lebih homogen serta
mudah didispersikan kembali. Walaupun terjadi creaming, basis emulsi gom arab
sangat mudah didispersikan kembali membentuk masa yang homogen. Dalam
42
pembuatan emulsi oral masih dip erbolehkan pembentukan cream selama tidak
terjadi pemisahan dan emulsi mudah didispersikan kembali (Ansel, 1989). Gom arab
banyak digunakan secara luas dalam pembuatan emulsi minyak-minyak lemak serta
mempunyai sifat lebih mudah larut dalam air dengan rentang konsentrasi yang luas.
Oleh karena itu, berdasarkan sifat-sifat di atas serta hasil orientasi basis emulsi maka
emulgator gom arab dipilih untuk membuat formula selanjutnya.
Sebagai obat, secara empiris minyak buah merah digunakan sebanyak dua
sampai tiga sendok makan sehari. Dosis ini dikatakan relatif aman berdasarkan hasil
penelitian yang telah dilakukan di Institut Teknologi Bandung dan Universitas
Indonesia (Anonim, 2005). Sedangkan untuk orang yang sehat digunakan sebanyak
satu sendok makan sehari (Budi, 2005; Paimin, 2005). Pada penelitian ini akan
digunakan dosis satu sendok makan sehari, yang dibagi menjadi tiga sendok makan
sehari setelah diformulasikan dalam bentuk emulsi.
Pada penelitian ini dipilih jenis emulsi minyak dalam air (m/a) untuk
memudahkan penggunaan serta untuk kenyamanan pada waktu digunakan sebab
jenis emulsi ini mudah dicuci dengan air.
4.3.2
Hasil Formulasi Sediaan Emulsi
Formula sediaan emulsi yang akan dibuat dapat dilihat pada Tabel 4.5.
Tabel 4.5 Formula Sediaan Emulsi
Bahan
Minyak Buah Merah
Gom arab
Sorbitol
Sukrosa
Asam sitrat
Narium sitrat
Natrium benzoat
Air sampai
E0
33,3
0
25
15
0,25
0,25
0,1
100
Konsentrasi Bahan (%)
E1
E2
33,3
33,3
12,5
10
25
25
15
15
0,25
0,25
0,25
0,25
0,1
0,1
100
100
E3
33,3
15
25
15
0,25
0,25
0,1
100
Pada literatur, jumlah gom arab yang biasa digunakan dalam pembuatan
emulsi adalah sebanyak 10-20% (Rowe et al, 2003). Pada literatur lain disebutkan
bahwa untuk minyak-minyak lemak gom arab digunakan sebanyak ½ kali dari bobot
minyak (Van Duin, 1954). Apabila dihitung berdasarkan bobot minyak yang
43
digunakan dalam formula di atas maka banyaknya gom arab yang digunakan adalah
±15 gram (b/v). Berdasarkan hasil orientasi, penggunaan gom arab lebih dari 15%
dalam pembuatan emulsi minyak buah merah menghasilkan sediaan emulsi yang
terlalu kental sehingga sukar dikocok kembali pada saat penggunaan. Oleh karena
itu jumlah gom arab yang digunakan adalah 10, 12,5 dan 15%.
Penambahan sorbitol 20-35% dalam larutan oral dapat digunakan sebagai
pengental dan pemanis. Oleh karena tingkat kemanisan sorbitol hanya setengahnya
sukrosa, maka ditambahkan sukrosa sebanyak 15% untuk menghasilkan rasa manis
yang cukup pada sediaan emulsi.
Asam sitrat digunakan untuk meminimalisir after taste yang tidak enak dari
minyak buah merah. Selain itu, asam sitrat dengan natrium sitrat berguna sebagai
buffering agent atau zat pendapar yang berfungsi untuk mempertahankan pH sediaan
apabila ada penambahan sedikit asam ataupun karena pengaruh luar lainnya
misalnya pemanasan. Penggunaan asam sitrat sebagai buffering agent adalah
sebanyak 0,1-2%, sedangkan penggunaan natrium sitrat sebanyak 0,3-2%.
Bahan pengawet digunakan untuk mencegah kerusakan pada sediaan emulsi
yang dapat disebabkan oleh mikroba ataupun oksidasi oleh udara. Dalam penelitian
ini digunakan pengawet untuk fase air yang bekerja sebagai antimikroba, sedangkan
untuk fase minyak biasanya digunakan pengawet yang bekerja sebagai antioksidan
untuk mencegah ketengikan. Karena kandungan terbesar minyak buah merah adalah
vitamin E yang merupakan antioksidan maka dalam penelitian ini tidak diperlukan
pengawet lain untuk fase minyak. Pengawet natrium benzoat sebagai antimikroba
untuk fase air sebanyak 0,1% digunakan berdasarkan acuan pada Peraturan Menteri
Kesehatan RI No.722/Menkes/Per/IX/1988 mengenai bahan tambahan makanan
berupa bahan pengawet yang boleh digunakan dalam pembuatan sari buah salah
satunya adalah asam benzoat dan garamnya.
Strawberry flavour digunakan sebagai pemberi aroma sediaan dan hanya
ditambahkan pada sediaan untuk uji kesukaan. Hal ini dikarenakan pada sediaan uji
stabilitas harus dievaluasi apakah ada perubahan bau dari sediaan selama
penyimpanan. Fungsi lain dari penambahan zat pengaroma adalah untuk membantu
sensori dari warna minyak buah merah setelah dibuat emulsi.
44
4.4 Hasil Evaluasi Sediaan Emulsi
4.4.1 Hasil Pengamatan Organoleptis
Hasil pengamatan organoleptis sediaan emulsi dapat dilihat pada Tabel 4.6.
Tabel 4.6 Hasil Pengamatan Organoleptis
Formula/
Pengamatan
1
3
Hasil Pengamatan Organoleptis Hari ke7
14
21
28
35
42
Bentuk
ce
ce
ce
ce
ce
ce
Rasa
mns
mns
mns
mns
mns
mns
E0 Bau
kh
kh
kh
kh
kh
kh
mp
mp
mp
mp
mp
mp
Warna
Konsistensi
ms
ms
ms
ms
ms
ms
Bentuk
ck
ck
ck
ck
ck
ck
Rasa
mns
mns
mns
mns
mns
mns
E1 Bau
kh
kh
kh
kh
kh
kh
Warna
o
o
o
o
o
o
Konsistensi
hm
cr
cr
cr
cr
cr
Bentuk
ck
ck
ck
ck
ck
ck
Rasa
mns
mns
mns
mns
mns
mns
E2 Bau
kh
kh
kh
kh
kh
kh
Warna
mj
mj
mj
mj
mj
mj
Konsistensi
hm
cr
cr
cr
cr
cr
Bentuk
ck
ck
ck
ck
ck
ck
Rasa
mns
mns
mns
mns
mns
mns
E3 Bau
kh
kh
kh
kh
kh
kh
Warna
m
m
m
m
m
m
Konsistensi
hm
hm
hm
cr
cr
cr
Keterangan:
E0 : formula dengan gom arab 0% (blanko)
ce : cairan encer
E1 : formula dengan gom arab 10%
mns : manis
E2 : formula dengan gom arab 12,5%
kh : khas
E3 : formula dengan gom arab 15%
mp : merah pekat
ck : cairan kental
o : oranye
ce
mns
kh
mp
ms
ck
mns
kh
o
cr
ck
mns
kh
mj
cr
ck
mns
kh
m
cr
mj
m
ms
hm
cr
ce
mns
kh
mp
ms
ck
mns
kh
o
cr
ck
mns
kh
mj
cr
ck
mns
kh
m
cr
49
56
ce
mns
kh
mp
ms
ck
mns
kh
o
cr
ck
mns
kh
mj
cr
ck
mns
kh
m
cr
ce
mns
kh
mp
ms
ck
mns
kh
o
cr
ck
mns
kh
mj
cr
ck
mns
kh
m
cr
: merah jonjot
: merah
: memisah
: homogen
: creaming
Hasil pengamatan organoleptis menunjukkan bahwa sediaan emulsi tidak
mengalami perubahan selama 56 hari penyimpanan, baik dari segi bentuk, rasa, bau,
warna, maupun konsistensinya. Hasil pengamatan ini juga membuktikan bahwa zatzat lain yang ditambahkan ke dalam sediaan emulsi seperti pemanis, asam, pengawet
tercampurkan secara baik satu sama lain. Warna sediaan emulsi antara formula yang
satu dengan yang lain sedikit berbeda sesuai dengan banyaknya penambahan air.
Semakin banyak penambahan air maka sediaan emulsi akan menghasilkan warna
yang lebih cerah.
45
4.4.2 Hasil Pengamatan Rasio Pemisahan Fase
Hasil pengamatan rasio pemisahan fase sediaan emulsi dapat dilihat pada
Tabel 4.7.
Tabel 4.7 Hasil Pengamatan Rasio Pemisahan Fase
Formula
E0
E1
E2
E3
1
0,74
0,24
0,19
0,00
3
0,74
0,30
0,24
0,00
Rasio Pemisahan Fase (cm) Hari ke7
14
21
28
35
42
0,74 0,74 0,73 0,74 0,74 0,74
0,36 0,37 0,40 0,40 0,40 0,41
0,30 0,31 0,32 0,33 0,34 0,34
0,00 0,00 0,16 0,18 0,18 0,19
49
0,74
0,41
0,35
0,21
56
0,74
0,41
0,35
0,21
Keterangan:
E0
: formula dengan gom arab 0% (blanko)
E1
: formula dengan gom arab 10%
E2
: formula dengan gom arab 12,5%
E3
: formula dengan gom arab 15%
Besarnya rasio pemisahan antara fase minyak dengan fase air berbanding
lurus dengan besarnya kecepatan pembentukan cream, sedangkan kecepatan
pembentukan cream dipengaruhi oleh jumlah gom arab yang ditambahkan. Hasil
analisis data menyimpulkan bahwa H0 ditolak (F hitung < F tabel, taraf signifikan
0,05). Artinya, terdapat perbedaan yang nyata mengenai rasio pemisahan fase dari
masing-masing sediaan uji karena perbedaan konsentrasi gom arab dan lamanya
penyimpanan. Walaupun besar rasio pemisahan fase antarformula berbeda nyata,
namun peningkatan rasio pemisahan fase setiap minggunya selama 56 hari
penyimpanan tidak berbeda nyata dan tidak setiap minggu mengalami perubahan.
Selain itu ketiga formula emulsi masih mudah didispersikan kembali. Dapat dilihat
dalam Tabel 4.5 bahwa formula E3 merupakan formula dengan rasio pemisahan fase
terkecil. Ini berarti formula E3 merupakan formula yang paling stabil dilihat dari
rasio pemisahan fase karena kecepatan pembentukan creamnya paling kecil.
4.4.3 Hasil Pengukuran Viskositas
Hasil analisis data pengukuran viskositas secara statistik menyimpulkan
bahwa H0 ditolak (F hitung < F tabel, taraf signifikan 0,05). Artinya, terdapat
perbedaan yang nyata mengenai nilai viskositas dari masing-masing sediaan uji
karena perbedaan konsentrasi gom arab dan lamanya penyimpanan. Dapat dilihat
46
dalam Tabel 4.8 bahwa setiap penambahan gom arab 2,5 % antara ketiga formula
emulsi memberikan nilai viskositas rata-rata dua kali lebih besar. Selain itu, selama
56 hari penyimpanan ketiga formula mengalami kenaikan viskositas.
Tabel 4.8 Hasil Pengukuran Viskositas
Formula
Viskositas (cps) Hari ke1
3
7
14
21
E0
7,50
7,50
7,50
7,50
7,50
E1
294,00 303,00 310,00 325,00 333,00
E2
469,00 488,00 500,00 523,00 530,00
E3
854,50 858,00 858,00 865,00 865,00
Keterangan:
E0
: formula dengan gom arab 0% (blanko)
E1
: formula dengan gom arab 10%
E2
: formula dengan gom arab 12,5%
E3
: formula dengan gom arab 15%
28
35
42
49
56
7,50
340,00
538,00
872,00
7,50
350,00
543,00
873,00
7,50
353,00
560,00
878,00
7,50
361,00
587,00
880,00
7,50
365,00
593,00
890.00
Kenaikan viskositas ini disebabkan oleh reaksi air dengan gom arab
membentuk polimer-polimer dalam larutan. Sejumlah besar produk farmasi seperti
dispersi cair dari gom alam dan sintetis, tragakan, natrium alginat, metil selulosa,
dan natrium karboksimetil selulosa menunjukkan aliran pseudoplastik (Martin,
1983).
Viskositas sediaan tanpa emulgator (blanko) terlihat berbeda nyata
dibandingkan dengan sediaan yang dibuat menjadi emulsi dengan penambahan gom
arab yang bervariasi. Sediaan tanpa penambahan gom arab sebagai emulgator
mempunyai viskositas yang hampir sama dengan viskositas minyak buah merah
(viskositas minyak buah merah = 7,75 cps), dan jumlah ini jauh lebih kecil dari
viskositas sediaan setelah diformulasikan sebagi emulsi.
Viskositas yang cukup tinggi dari suatu sediaan farmasi mempengaruhi
penerimaan pasien karena sediaan yang cukup kental memudahkan penuangan dari
wadah, namun viskositas yang terlalu besar pun akan menyebabkan sediaan sukar
didispersikan kembali dan sulit untuk dituang.
4.4.4
Hasil Pengukuran pH
Pada Tabel 4.9 terlihat bahwa pH ketiga formula emulsi selama waktu
penyimpanan mengalami sedikit penurunan selama 56 hari penyimpanan.
47
Tabel 4.9 Hasil Pengukuran pH
Formula
pH Hari ke1
3
7
14
E0
3,65
3,63
3,64
3,59
E1
3,56
3,55
3,59
3,59
E2
3,59
3,51
3,47
3,47
E3
3,70
3,59
3,54
3,54
Keterangan:
E0
: formula dengan gom arab 0% (blanko)
E1
: formula dengan gom arab 10%
E2
: formula dengan gom arab 12,5%
E3
: formula dengan gom arab 15%
21
28
35
42
49
56
3,51
3,53
3,45
3,54
3,53
3,53
3,59
3,56
3,52
3,56
3,53
3,57
3,52
3,52
3,54
3,56
3,52
3,51
3,50
3,53
3,50
3,50
3,51
3,52
Pada Tabel 4.9 terlihat bahwa pH ketiga formula emulsi selama waktu
penyimpanan mengalami sedikit penurunan
selama 56
hari penyimpanan.
Perhitungan data secara statistik menyimpulkan bahwa H0 ditolak (F hitung < F
tabel, taraf signifikan 0,05). Artinya, terdapat perbedaan yang nyata mengenai nilai
pH dari masing masing sediaan uji karena perbedaan konsentrasi gom arab dan
lamanya penyimpanan.
Selama waktu penyimpanan pH sediaan uji stabil pada pH 3 dan mengalami
penurunan menjadi tidak kurang dari 3,30. Hal ini dikarenakan pada setiap sediaan
uji
ditambahkan
zat
pendapar
b( uffering
agent)
yang
berfungsi
untuk
mempertahankan pH sediaan. Zat pendapar ini adalah asam sitrat dan natrium sitrat
sebagai garamnya.
4.4.5
Hasil Uji Redispersibilitas
Hasil uji redispersibilitas dapat dilihat pada Tabel 4.10. Pada Tabel tersebut
tampak bahwa sediaan tanpa emulgator tidak dapat diredispersikan kembali karena
dengan pengocokan yang kuat pun campuran fase minyak dan fase air memisah
kembali dengan cepat hanya beberapa saat setelah pengocokan. Hal ini terjadi
karena tidak ada emulgator yang bekerja membungkus atau mengelilingi globulglobul fase dalam serta mencegah bersatunya kembali globul-globul tersebut.
Selama 56 hari penyimpanan semua sediaan emulsi mengalami peningkatan
nilai viskositas. Oleh karena itu, jumlah pengocokan yang diperlukan pun lebih
banyak. Selain karena peningkatan viskositas, pembentukan lapisan cream yang
tebal pada penyimpanan yang semakin lama menyebabkan suatu sediaan emulsi
48
memerlukan pengocokan yang lama untuk menjadi homogen kembali karena
sebagian fase minyak mengalami penggabungan membentuk lapisan yang lebih
pekat di permukaan. Namun demikian, semua sediaan tetap mudah didispersikan
kembali dengan 5-16 kali pengocokan.
Tabel 4.10 Hasil Uji Redispersibilitas
Redispersibilitas (jumlah pengocokan) Hari keFormula
E0
E1
E2
E3
1
3
7
14
21
28
35
42
49
56
10
7
5
10
8
6
12
10
6
12
10
6
12
10
7
13
12
9
14
12
9
14
12
9
16
13
10
16
14
11
Keterangan:
: tidak dapat diredispersikan
E0
: formula dengan gom arab 0% (blanko)
E1
: formula dengan gom arab 10%
E2
: formula dengan gom arab 12,5%
E3
: formula dengan gom arab 15%
Pembentukan cream masih diperbolehkan dalam suatu sediaan emulsi oral
karena terjadinya creaming bersifat reversibel, artinya dengan pengocokan yang
cukup emulsi tersebut dapat kembali homogen. Berbeda dengan koalesensi/breaking
(pecahnya sediaan emulsi) yang bersifat ireversibel.
4.4.6 Hasil Uji Tipe Emulsi
Hasil uji tipe emulsi dapat dilihat pada Tabel 4.11. Terdapat beberapa cara
untuk menentukan jenis emulsi diantaranya
dengan dialiri
listrik, dilihat
fluoresensinya, penambahan zat pewarna, dan dengan penambahan fase luar
(pengenceran). Dalam penelitian ini tipe emulsi pada hari pertama dan terakhir
penyimpanan ditentukan dengan cara pengenceran. Karena tipe emulsi yang dibuat
adalah tipe m/a (minyak dalam air) maka sediaan diencerkan dengan air. Air yang
ditambahkan pada sediaan emulsi dapat bercampur seluruhnya. Hal ini berarti bahwa
selama 56 hari penyimpanan tidak terjadi perubahan tipe emulsi (inversi) dari
sediaan yang dibuat.
49
Tabel 4.11 Hasil Uji Tipe Emulsi
Tipe Emulsi Hari keFormula
E1
E2
E3
1
56
m/a
m/a
m/a
m/a
m/a
m/a
Keterangan:
m/a
: tipe emulsi minyak dalam air
E1 : formula dengan gom arab 10%
E2 : formula dengan gom arab 12,5%
E3 : formula dengan gom arab 15%
4.4.7
Hasil Pengamatan Mikroskopik
Pengamatan diameter globul minyak bertujuan untuk mengevaluasi adanya
koalesensi atau penggabungan globul-globul minyak menjadi lebih besar pada
sediaan emulsi selama 56 hari penyimpanan. Hasil uji statistik menyimpulkan H0
diterima (F hitung > F tabel, taraf signifikan 0,05). Artinya, tidak terdapat perbedaan
yang nyata mengenai diameter globul minyak dari masing-masing sediaan uji karena
perbedaan konsentrasi gom arab dan lamanya penyimpanan. Hal ini dapat dilihat
pada Tabel 4.12 bahwa perbedaan diameter globul antara emulsi yang satu dengan
yang lainnya serta perbedaan diameter globul tiap formula selama 56 hari
penyimpanan tidak jauh berbeda.
Tabel 4.12 Hasil Pengamatan Mikroskopik
Formula
E0
E1
E2
E3
Diameter Globul Minyak (µm)
Rata-rata Hari ke1
56
121,91
125,76
23,56
24,32
9,19
13,08
7,74
10,66
Keterangan:
E0 : formula dengan gom arab 0% (blanko)
E1 : formula dengan gom arab 10%
E2 : formula dengan gom arab 12,5%
E3 : formula dengan gom arab 15%
Seperti pada pengamatan rasio pemisahan fase, formula E0, E1, E2, dan E3
berturut-turut
mempunyai
nilai
diameter globul
rata-rata
yang
semakin
50
kecil/semakin menurun walaupun dengan selisih yang tidak begitu besar antara
ketiga sediaan emulsi. Hal ini dikarenakan semakin besar penambahan gom arab,
maka
akan
semakin
banyak
globul minyak
yang
terbungkus
oleh film
multimolekuler yang dibentuk gom.
4.4.8 Hasil Penentuan Sifat Aliran
Penentuan sifat aliran dari sediaan emulsi dilakukan dengan memplotkan
viskositas sediaan dengan variasi kecepatan geser. Pada umumnya sediaan emulsi
farmasetis mempunyai sifat aliran pseudoplastik. Viskositas zat pseudoplastik
berkurang dengan meningkatnya kecepatan geser (Martin, 1983). Hal tersebut dapat
dilihat dalam Tabel 4.13 bahwa pada kecepatan geser yang paling besar dihasilkan
viskositas yang paling kecil. Semua sediaan uji dapat dibaca pada kecepatan geser
2,5, 5, dan 10 rpm, sedangkan pada kecepatan geser 20 rpm sediaan E3 tidak dapat
dibaca (over limit). Oleh karena itu, kecepatan geser 2,5 rpm, 5 rpm, dan 10 rpm
yang digunakan untuk membuat kurva sifat aliran.
Kecepatan
Geser (rpm)
2,5
5
10
Tabel 4.13 Hasil Penentuan Sifat Aliran
Viskositas (cps) Rata-rata Hari ke-1
E0
E1
E2
E3
10,00
308,00
494,00
920,00
9,67
300,33
467,33
883,67
7,50
294,17
469,00
854,50
Kecepatan
Geser (rpm)
2,5
5
10
Viskositas (cps) Rata-rata Hari ke-56
E0
E1
E2
E3
10,00
402,67
633,33
926,67
9,67
396,67
590,00
880,00
7,50
365,83
593,33
890,00
Keterangan:
E0
: formula dengan gom arab 0% (blanko)
E1
: formula dengan gom arab 10%
E2
: formula dengan gom arab 12,5%
E3
: formula dengan gom arab 15%
Berdasarkan bentuk garis pada kurva yang dibuat pada hari pertama dan
terakhir pengujian (Lampiran 13), dapat disimpulkan bahwa sediaan emulsi
mempunyai sifat aliran pseudoplastik.
51
4.4.9 Hasil Uji Mikrobiologi
Pemeriksaan angka lempeng total sediaan emulsi dapat dilihat pada Tabel
4.14. Pada hari pertama dan terakhir penyimpanan bertujuan untuk mengevaluasi
efektifitas dari
pengawet yang digunakan. Penambahan zat pengawet natrium
benzoat digunakan untuk menghambat pertumbuhan mikroba karena sediaan yang
dibuat adalah sediaan dengan dosis berganda dan mengandung sejumlah air sebagai
pembawanya. Penambahan zat pengawet ini dapat meminimalkan kontaminasi
sediaan selama penggunaan. Oleh karena sediaan E3 mengandung gom arab paling
banyak, maka jumlah air yang harus ditambahkan untuk membuat emulsi lebih
sedikit dari sediaan E1 dan E2, sehingga menghasilkan angka lempeng total yang
paling kecil.
Tabel 4.14 Hasil Uji Mikrobiologi
Formula
E1
E2
E3
Angka Lempeng Total
(∑koloni/mL) Hari ke1
56
1200
2800
500
1400
100
300
Keterangan:
E1
: formula dengan gom arab 10%
E2
: formula dengan gom arab 12,5%
E3
: formula dengan gom arab 15%
Semakin banyak penambahan air, jumlah mikrobanya semakin meningkat
karena air adalah media pertumbuhan yang baik untuk mikroba. Pada umumnya
mikroba hidup pada lingkungan yang memiliki pH antara 6,5-7,5 (Pelczar and Chan,
1986). Semua sediaan emulsi yang dibuat memiliki pH di bawah 4. Hal ini membuat
mikroba sulit untuk bertahan hidup dalam sediaan emulsi karena pHnya terlalu kecil
(asam). Oleh karena itu, sampai hari terakhir penyimpanan pun angka lempeng
totalnya jauh di bawah angka maksimal syarat cemaran mikroba pada sediaan cair
yaitu 1x10 4 koloni (Lampiran 1).
52
4.5 Hasil Analisis Kualitatif Kandungan Kimia Minyak Buah Merah dalam
Sediaan Emulsi
Analisis kandungan kimia minyak buah merah dalam sediaan emulsi dengan
menggunakan fasa diam silika gel GF 254 dan pengembang eter minyak bumi
(emb), etil asetat dan propanol dengan perbandingan 95:3:2 menghasilkan empat
bercak yang dapat dilihat di bawah sinar UV 254 dan 366 nm. Keempat bercak
tersebut mempunyai Rf ~ 0,28, ~ 0,33, ~ 0,59, dan ~ 0,77. Bercak yang dihasilkan
oleh minyak buah merah dalam sediaan emulsi sama dengan bercak yang dihasilkan
minyak buah merah murni. Hal ini membuktikan bahwa tidak ada perubahan
kandungan zat aktif dari minyak buah merah setelah diformulasikan sebagai emulsi.
Warna bercak yang diamati di bawah sinar UV 254 dan 366 nm dapat dilihat dalam
Tabel 4.15.
Tabel 4.15 Warna Bercak Hasil KLT
Rf
~ 0,28
~ 0,33
~ 0,59
~ 0,77
4.6
Warna Bercak pada Sinar UV
254 nm
Merah
Merah keunguan
Merah
Merah Muda
Warna Bercak pada Sinar UV
366 nm
Coklat kemerahan
Coklat
Biru keunguan
Coklat kemerahan
Hasil Uji Kesukaan (Hedonic Test)
Berdasarkan hasil uji stabilitas sediaan emulsi selama 56 hari penyimpanan
dapat disimpulkan bahwa sediaan dengan penambahan gom arab 15% (E3)
merupakan sediaan yang paling stabil di antara ketiga sediaan emulsi. Oleh karena
itu, sediaan E3 digunakan untuk uji kesukaan dengan memvariasikan perbandingan
sorbitol dan sukrosa serta asam sitrat seperti yang tertera pada Tabel 4.16.
Formula A, B dan C merupakan sediaan E3 yang penambahan sukrosa dan
asam sitratnya divariasikan, yaitu dengan menonjolkan rasa manis pada formula A
dan menonjolkan rasa asam pada formula C. Selain itu, pada ketiga formula
ditambahkan pengaroma strawberry dalam jumlah yang sama yang berfungsi
sebagai pembantu sensori dari warna asli emulsi yang berwarna merah. Selanjutnya
53
ketiga formula di atas diujikan pada 30 orang panelis meliputi parameter rasa dan
kekentalannya.
Tabel 4.16 Formula Sediaan Emulsi Untuk Uji Kesukaan
Bahan
Minyak Buah Merah
Gom arab
Sorbitol
Sukrosa
Asam sitrat
Narium sitrat
Natrium benzoat
Strawberry flavour
Air sampai
Konsentrasi Bahan (%)
FA
FB
FC
33,3
33,3
33,3
15
15
15
25
25
25
7,5
12,5
17,5
0,35
0,25
0,15
0,35
0,25
0,15
0,1
0,1
0,1
qs
qs
qs
100
100
100
Data yang diperoleh dari kuisioner merupakan data dengan skala ordinal.
Untuk mengetahui apakah terdapat perbedaan tingkat kesukaan panelis terhadap
ketiga formula dengan parameter rasa dan kekentalan, maka data tersebut harus
diubah ke skala interval menggunakan Metode Succesive Interval kemudian diolah
dengan daftar anava.
Hasil analisis data secara statistik menggunakan Desain Acak Sempurna
(DAS) untuk parameter rasa menunjukkan bahwa H0 diterima (F hitung < F tabel,
taraf signifikan 0,05). Artinya, tidak terdapat perbedaan kesukaan panelis terhadap
rasa dari ketiga formula emulsi minyak buah merah. Hal ini dapat dilihat dari selisih
nilai rata-rata pada ketiga formula uji sangatlah kecil. Namun berdasarkan nilai rataratanya yang paling besar
maka dapat disimpulkan bahwa formula B dengan
sukrosa 12,5% dan asam sitrat 0,25% merupakan formula yang paling disukai.
Formula C menempati urutan ketiga karena rasanya yang terlalu asam.
Selisih penambahan sukrosa antara formula yang satu dengan yang lain
sebanyak 5% ternyata tidak memberikan perbedaan kekentalan yang nyata pada
ketiga formula. Hal ini terbukti dari hasil uji statistik yang memberikan kesimpulan
bahwa H0 diterima (F hitung < F tabel, taraf signifikan 0,05). Artinya, tidak terdapat
perbedaan kesukaan panelis terhadap kekentalan dari ketiga formula emulsi minyak
54
buah merah. Walaupun demikian, berdasarkan nilai rata-ratanya dapat disimpulkan
bahwa sediaan A merupakan sediaan yang paling disukai kekentalannya.
Tabel 4.17 Nilai Rata-rata Hasil Uji Hedonik
Parameter
Rasa
Kekentalan
Formula A
2,9922
3,0264
Nilai Rata-rata
Formula B
3,0282
3,0254
Formula C
1,9850
2,9912
BAB V
KESIMPULAN DAN SARAN
5.1
Kesimpulan
Dari penelitian mengenai pengujian aktivitas antioksidan dan formulasi
sediaan emulsi minyak buah merah dapat disimpulkan bahwa:
1. Konsentrasi minyak buah merah mempunyai daya peredaman 50% DPPH
(EC50) sebesar 0,203%.
2. Berdasarkan hasil orientasi basis emulsi yang diamati selama 7 hari, gom
arab merupakan emulgator terbaik untuk membuat formula sediaan emulsi
minyak buah merah.
3. Ketiga formula emulsi minyak buah merah dengan variasi jumlah gom
arab masing-masing 10, 12,5 dan 15% relatif stabil selama penyimpanan.
4. Formula dengan gom arab 15% merupakan formula yang paling stabil
berdasarkan
uji
stabilitas,
selanjutnya
formula
ini
divariasikan
penambahan sukrosa dan asam sitratnya dan digunakan untuk uji kesukaan
(FA, FB, dan FC).
5. Nilai rata-rata
hasil uji kesukaan terhadap
tiga
formula emulsi
menunjukkan bahwa formula B merupakan formula yang paling disukai
berdasarkan rasanya, sedangkan formula A merupakan formula yang
paling disukai dari segi kekentalannya.
5.2
Saran
Berdasarkan hasil yang diperoleh dari penelitian dapat disarankan
beberapa hal berikut yaitu:
1. Dilakukan penelitian lebih lanjut mengenai variasi jumlah zat-zat
tambahan lain dalam sediaan emulsi, seperti zat pengaroma selain
strawberry.
2. Dilakukan penelitian lebih lanjut mengenai jenis emulgator lainnya untuk
membuat sediaan emulsi minyak buah merah, seperti gabungan antara
emulgator alam dengan emulgator sintetik.
57
58
3. Dilakukan penentuan HLB (hydrophilic lipophilic balance) minyak buah
merah untuk memudahkan pembuatan sediaan emulsi dengan emulgator
sintetik atau gabungan emulgator sintetik dan emulgator alam.
4. Dilakukan penelitian mengenai kandungan senyawa aktif dalam minyak
buah merah mengingat terbatasnya informasi ilmiah mengenai khasiat
serta karakteristik minyak buah merah, untuk memperluas pemanfaatan
minyak buah merah sebagai bahan berkhasiat obat di Indonesia.
5. Membuat bentuk sediaan lain dari minyak buah merah untuk lebih
meningkatkan nilai jual serta nilai guna dari minyak buah merah.
DAFTAR PUSTAKA
Anief, M., 1999, Sistem Dispersi, Formulasi Suspensi dan Emulsi, Yogyakarta:
Gadjah Mada University Press, Halaman: 56, 65-66, 71-79
Ansel, H. C., 1989, Pengantar Bentuk Sediaan Farmasi, Edisi Keempat, Jakarta:
Universitas Indonesia Press, Halaman: 145-146, 377-381
Anonim, 1978, Formularium Nasional, Edisi Kedua, Departemen Kesehatan
Republik Indonesia, Halaman: 314
_______, 1979, Farmakope Indonesia, Edisi Ketiga, Departemen Kesehatan
Republik Indonesia, Halaman: 895-898
_______, 1998, Cara Uji Cemaran Mikroba (SNI 19-2897-1992), BSN, Jakarta
_______, 1998, Cara Uji Minyak dan Lemak (SNI-01-3555-1998), BSN, Jakarta
_______, 2005, Panduan Praktis Buah Merah, Bukti Empiris dan Ilmiah, Jakarta:
Penebar Swadaya, Halaman: 58-61
_______, 2005, Mengenai Buah Merah. http//www.buah-merah.com
Aulton, M. E., 1988, Pharmaceutics, The Science of Dosage Form Design,
London: Churchill Livingstone, Page: 292-297
Basset, J., dkk, 1994, Buku Ajar Vogel, Kimia Analisis Kuantitatif Anorganik,
Alih Bahasa : Dr. A. Hadyana Pudjaatmaka dan Ir. L. Setiono, Jakarta:
Penerbit Buku Kedokteran EGC, Halaman: 228-229
Budi, I.M., Paimin, F.R., 2005, Buah Merah, Jakarta: Penebar Swadaya,
Halaman: 12-19, 22, 43-50, 52-56
Gennaro, A. R., 1990, Remington’s Pharmaceutical Science, Volume 2, Easton,
Pennsylvania: Mack Publishing Company, Page: 500
Gritter, R. J., James, M. B., Arthur, E. S, 1991, Pengantar Kromatografi, Edisi
Kedua, Bandung: Penerbit ITB, Halaman: 107-159
Javanmardi, J., Stushnoff, C., Locke, E., Vivanco, J.M., 2003, Antioxidant
Activity and Total Phenolic Content of Iranian Ocimum Accessions,
Journal of Food Chemistry, 83, 547-550.
59
60
Lachman, L., Lieberman, H. A., Kanig, J. L., 1994. Teori dan Praktek Farmasi
Industri, Edisi Ketiga, Jakarta: Universitas Indonesia Press, Halaman:
1031-1032
Martin, A., Swarbrick, J., Commarata, A., 1993, Farmasi Fisik, Edisi Ketiga,
Jakarta: Universitas Indonesia Press, Halaman: 1079-1089
Pelczar, M. J., Chan, E. C. S., 1986, Dasar-dasar Mikrobiologi, Jakarta:
Universitas Indonesia Press, Halamam: 140-141
Rowe, R. C., Sheskey, P. J., Weller, P. J., 2003, Handbook of Pharmaceutical
Excipient, 4th Edition, USA: Pharmaceutical Press and American
Pharmaceutical Association, Page: 1-2, 596, 622, 549, 560
Soedibyo, M., 1998, Alam Sumber Kesehatan, Manfaat dan Kegunaan, Jakarta:
Balai Pustaka, Halaman: 1
Sudjana, 1994, Desain dan Analisis Eksperimen, Edisi Keempat, Bandung:
Tarsito, Halaman: 14-18, 61-70
Van Duin, C. F., 1954, Buku Penuntun Ilmu Resep dalam Praktek dan Teori,
Jakarta: Soeroengan, Halaman: 64
White, R.F., 1964, Pharmaceutical Emulsion And Emulsifying Agent, 4th Edition,
London: The Chemist And Druggist, Page: 1