Przejdź do zawartości

Grzyby nicieniobójcze: Różnice pomiędzy wersjami

Z Wikipedii, wolnej encyklopedii
[wersja przejrzana][wersja przejrzana]
Usunięta treść Dodana treść
m WP:SK, drobne techniczne
Selso (dyskusja | edycje)
drobne merytoryczne, drobne redakcyjne
Linia 9: Linia 9:
Grzyby nicieniobójcze aktywnie łapiące nicienie są fakultatywnymi [[drapieżnik]]ami i [[grzyby pasożytnicze|pasożytami]] – w naturze mogą żyć jako [[grzyby saprotroficzne]], a atakują nicienie dopiero wtedy, gdy znajdą się one w ich pobliżu. Obserwowane są zarówno z aparatami pułapkowymi, jak i bez nich. Dzieje się tak prawdopodobnie dlatego, że budowa pułapek jest procesem wysoce energochłonnym. ''Arthrobotrys oligospora'' potrafi wykryć obecność nicieni w pobliżu gleby i tworzy pułapki tylko wtedy, gdy są one obecne. Grzyb rozpoznaje obecność nicienia na podstawie wydzielanych przez niego [[feromony|feromonów]], takich jak [[askarozydy]]. Po ich wykryciu strzępki grzyba wabią nicienia wytwarzając substancje naśladujące te, których zwierzę używa do znalezienia pożywienia i przyciągnięcia partnerów<ref name=art />.
Grzyby nicieniobójcze aktywnie łapiące nicienie są fakultatywnymi [[drapieżnik]]ami i [[grzyby pasożytnicze|pasożytami]] – w naturze mogą żyć jako [[grzyby saprotroficzne]], a atakują nicienie dopiero wtedy, gdy znajdą się one w ich pobliżu. Obserwowane są zarówno z aparatami pułapkowymi, jak i bez nich. Dzieje się tak prawdopodobnie dlatego, że budowa pułapek jest procesem wysoce energochłonnym. ''Arthrobotrys oligospora'' potrafi wykryć obecność nicieni w pobliżu gleby i tworzy pułapki tylko wtedy, gdy są one obecne. Grzyb rozpoznaje obecność nicienia na podstawie wydzielanych przez niego [[feromony|feromonów]], takich jak [[askarozydy]]. Po ich wykryciu strzępki grzyba wabią nicienia wytwarzając substancje naśladujące te, których zwierzę używa do znalezienia pożywienia i przyciągnięcia partnerów<ref name=art />.


Istnieją gatunki grzybów nicieniobójczych, które nie wytwarzają mechanizmów pułapkowych, lecz porażają nicienie toksynami. [[Boczniak ostrygowaty]] (''Pleurotus ostreatus'') jest [[saprotrof]]em żyjącym na martwym drewnie drzew liściastych<ref name="griz">{{Cytuj |autor = Till R.Lohmeyer; Ute Kũnkele |tytuł = Grzyby. Rozpoznawanie i zbieranie |data = 2006 |isbn = 83-85444-65-3 |miejsce = Warszawa}}</ref>, ale poluje również na występujące tam nicienie. Unieruchamia je za pomocą wytwarzanych przez strzępki toksyn, co pozwala na całkowite zajęcie tkanek ofiary w ciągu 24-48 godzin<ref name=phyl /><ref>{{Cytuj |tytuł = Antagonistic Effect of Some Species of Pleurotus on the Root-knot Nematode, Meloidogyne javanica in vitro |data dostępu = 2023-10-12 |opublikowany = scialert.net |doi = 10.3923/ppj.2006.173.177 |url = https://scialert.net/abstract/?doi=ppj.2006.173.177 |język = en}}</ref>. Podobną technikę stosują grzyby z rodzaju ''[[Hyphoderma]]''<ref name=stef />.
Istnieją gatunki grzybów nicieniobójczych, które nie wytwarzają mechanizmów pułapkowych, lecz porażają nicienie toksynami. [[Boczniak ostrygowaty]] (''Pleurotus ostreatus'') rozwija się na martwych i zamierających drzewach liściastych<ref name=griz />, ale poluje również na występujące tam nicienie. Unieruchamia je za pomocą wytwarzanych przez strzępki toksyn, co pozwala na całkowite zajęcie tkanek ofiary w ciągu 24–48 godzin<ref name=phyl /><ref name=an />. Podobną technikę stosują grzyby z rodzaju ''[[Hyphoderma]]''<ref name=stef />.


== Wewnętrzne nematopatogeny ==
== Wewnętrzne nematopatogeny ==
Linia 23: Linia 23:
== Przypisy ==
== Przypisy ==
<references>
<references>
<ref name=an>{{Cytuj |tytuł = Antagonista Effect of Some Species of Pleurotus on the Root-knot Nematode, Meloidogyne javanica in vitro |data dostępu = 2023-10-12 |opublikowany = scialert.net |doi = 10.3923/ppj.2006.173.177 |url = https://scialert.net/abstract/?doi=ppj.2006.173.177 |język = en}}</ref>.
<ref name="art">{{cytuj |url = https://elifesciences.org/articles/20023 |autor = Yen-Ping Hsueh; Matthew R. Gronquist; Erich M. Schwarz; Ravi David Nath, Ravi David; Ching-Han Lee; Shalha Gharib; Frank C. Schroeder; Paul W. Sternberg |tytuł = Nematophagous fungus Arthrobotrys oligospora mimics olfactory cues of sex and food to lure its nematode pre |data = 2017 |opublikowany = e-life |doi = 10.7554/eLife.20023}}</ref>
<ref name="art">{{cytuj |url = https://elifesciences.org/articles/20023 |autor = Yen-Ping Hsueh; Matthew R. Gronquist; Erich M. Schwarz; Ravi David Nath, Ravi David; Ching-Han Lee; Shalha Gharib; Frank C. Schroeder; Paul W. Sternberg |tytuł = Nematophagous fungus Arthrobotrys oligospora mimics olfactory cues of sex and food to lure its nematode pre |data = 2017 |opublikowany = e-life |doi = 10.7554/eLife.20023}}</ref>
<ref name="dra">{{Cytuj |autor = Maria Czygier, Mieczysława I. Boguś |tytuł = Drapieżne grzyby nicieniobójcze |czasopismo = Wiadomości Parazytologiczne |data = 2001 |wolumin = 47 |numer = 1 |s = 25–31 |url = http://agro.icm.edu.pl/agro/element/bwmeta1.element.agro-article-24e68b7d-2555-4a32-aff2-fe30dd588f9e/c/25-31.PDF}}</ref>
<ref name="dra">{{Cytuj |autor = Maria Czygier, Mieczysława I. Boguś |tytuł = Drapieżne grzyby nicieniobójcze |czasopismo = Wiadomości Parazytologiczne |data = 2001 |wolumin = 47 |numer = 1 |s = 25–31 |url = http://agro.icm.edu.pl/agro/element/bwmeta1.element.agro-article-24e68b7d-2555-4a32-aff2-fe30dd588f9e/c/25-31.PDF}}</ref>
<ref name="endo">{{cytuj |url = https://wn.com/nematophagous_fungi_part_1 |tytuł = Nematopathogenous Fungi. Part I |opublikowany = World News |data dostępu = 2023-10-09}}</ref>
<ref name="endo">{{cytuj |url = https://wn.com/nematophagous_fungi_part_1 |tytuł = Nematopathogenous Fungi. Part I |opublikowany = World News |data dostępu = 2023-10-09}}</ref>
<ref name=griz>{{Cytuj |autor = Till R.Lohmeyer; Ute Kũnkele |tytuł = Grzyby. Rozpoznawanie i zbieranie |miejsce = Warszawa |data = 2006 |isbn = 83-85444-65-3}}</ref>
<ref name="jat">{{cytuj |autor = P. Jatala |tytuł = Biological control of plant-parasitic nematodes |czasopismo = Annual Review of Phytopathology |wolumin = 24 |data = 1986 |s = 453–89 |doi = 10.1146/annurev.py.24.090186.002321}}</ref>
<ref name="jat">{{cytuj |autor = P. Jatala |tytuł = Biological control of plant-parasitic nematodes |czasopismo = Annual Review of Phytopathology |wolumin = 24 |data = 1986 |s = 453–89 |doi = 10.1146/annurev.py.24.090186.002321}}</ref>
<ref name="nemo">{{cytuj |url = https://link.springer.com/chapter/10.1007/3-540-33526-9_11 |autor = Luis V. Lopez-Llorca, Hans-Börje Jansson, José Gaspar Maciá Vicente, Jesús Salinas |tytuł = Nematophagous Fungi as Root Endophytes |opublikowany = Microbial Root Endophytes |s = 91–206 |data dostępu = 2023-10-09}}</ref>
<ref name="nemo">{{cytuj |url = https://link.springer.com/chapter/10.1007/3-540-33526-9_11 |autor = Luis V. Lopez-Llorca, Hans-Börje Jansson, José Gaspar Maciá Vicente, Jesús Salinas |tytuł = Nematophagous Fungi as Root Endophytes |opublikowany = Microbial Root Endophytes |s = 91–206 |data dostępu = 2023-10-09}}</ref>

Wersja z 09:52, 13 paź 2023

Martwy nicień ze strzepkami grzyba Harposporium anguillulae
Grzyb z rodzaju Arthrobotrys z siecią łapiącą nicienie

Grzyby nicieniobójcze, grzyby nematopatogeniczne (ang. nematophagous fungus) – grzyby drapieżne lub pasożytnicze atakujące drobne zwierzęta zaliczane do typu nicieni (Nematoda). Są jednym z nematopatogenów. Do 2000 roku opisano ponad 200 gatunków takich grzybów. Mogą atakować dorosłe nicienie, a także ich jaja i formy młodociane. Niektóre z nich od początku żyją wewnątrz nicieni, inne atakują je z zewnątrz w różny sposób, najczęściej za pomocą pułapek klejowych, pierścieni, które zaciskają się wokół nicienia, lub za pomocą toksyn. Do porażonego nicienia wrastają następnie strzępki grzyba, trawiąc go i wchłaniając substancje odżywcze[1]. Nematopatogeniczne gatunki występują wśród wszystkich grup grzybów, co świadczy o tym, że podczas ewolucji zjawisko to pojawiło się wielokrotnie, niezależnie od siebie[2]. Grzyby nicieniobójcze mogą być wykorzystane do zwalczania nicieni będących szkodnikami roślin uprawnych[3] oraz żyjących wolno stadiów nicieni pasożytniczych[4].

Mechanizmy łapania nicieni

Duża grupę stanowią grzyby pułapkowe aktywnie łapiące nicienie za pomocą różnego rodzaju pułapek. Unieruchomienie nicieni zachodzi mechanicznie lub dzięki zjawisku adhezji powierzchni ciała nicienia do struktur grzyba[5]. Występują głównie w górnych warstwach gleby, na pastwiskach, w warstwie opadłych liści, na namorzynach i w niektórych płytkich siedliskach wodnych. Grzyby z rodzaju Arthrobotrys, takie jak Arthrobotrys oligosporus, Arthrobotrys conoides, Arthrobotrys musiformis i Arthrobotrys superba tworzą trójwymiarowe siatki samoprzylepne, do których nicienie przyklejają się przez adhezję. Arthrobotrys dactyloides tworzy pierścienie, które po kontakcie z nicieniem bardzo szybko zwężają się i zaciskają unieruchamiając go[1]. U Monacrosporium doedycoides czas zaciśnięcia pętli trwa około 0,1 s, co uniemożliwia nicieniowi ucieczkę. U Orbilia oligospora pętle nie zaciskają się, ale jest ich wiele i nicień zaplątuje się w nich[6]. Dactylaria candida tworzy samoprzylepne gałęzie, Dactylellina haptotyla tworzy zarówno samoprzylepne stafanocysty, jak i nie zwężające się pierścienie. Po unieruchomieniu nicienia strzępki grzyba wnikają do wnętrza nicienia, trawiąc jego tkanki i wchłaniając powstałe z nich substancje pokarmowe[1]. Metacordyceps chlamydosporia do penetracji skorupek jaj nicieni wykorzystuje appressoria[7].

Grzyby nicieniobójcze aktywnie łapiące nicienie są fakultatywnymi drapieżnikami i pasożytami – w naturze mogą żyć jako grzyby saprotroficzne, a atakują nicienie dopiero wtedy, gdy znajdą się one w ich pobliżu. Obserwowane są zarówno z aparatami pułapkowymi, jak i bez nich. Dzieje się tak prawdopodobnie dlatego, że budowa pułapek jest procesem wysoce energochłonnym. Arthrobotrys oligospora potrafi wykryć obecność nicieni w pobliżu gleby i tworzy pułapki tylko wtedy, gdy są one obecne. Grzyb rozpoznaje obecność nicienia na podstawie wydzielanych przez niego feromonów, takich jak askarozydy. Po ich wykryciu strzępki grzyba wabią nicienia wytwarzając substancje naśladujące te, których zwierzę używa do znalezienia pożywienia i przyciągnięcia partnerów[8].

Istnieją gatunki grzybów nicieniobójczych, które nie wytwarzają mechanizmów pułapkowych, lecz porażają nicienie toksynami. Boczniak ostrygowaty (Pleurotus ostreatus) rozwija się na martwych i zamierających drzewach liściastych[9], ale poluje również na występujące tam nicienie. Unieruchamia je za pomocą wytwarzanych przez strzępki toksyn, co pozwala na całkowite zajęcie tkanek ofiary w ciągu 24–48 godzin[1][10]. Podobną technikę stosują grzyby z rodzaju Hyphoderma[11].

Wewnętrzne nematopatogeny

Jest grupa grzybów, które od początku żyją wewnątrz organizmu nicieni. Infekują je poprzez zarodniki typu zoospora lub konidium. Zarodniki te albo przylegają do naskórka nicienia, albo zostały przez niego połknięte. Ta grupa nematopatogenów to na ogół obligatoryjne pasożyty nicieni, czyli gatunki, które mogą żyć tylko wewnątrz nicieni[5]. Zoospory tych grzybów mają zdolności wyczuwania nicieni, aktywnie do nich dążą i zwykle gromadzą się wokół ich otworu gębowego. Po wniknięciu do organizmu nicienia rosną w nim, wchłaniając jego tkanki. Ich strzępki i przebijają kutikulę nicienia, a po pewnym czasie wytwarzają nowe, ruchliwe zoospory, gotowe do zarażenia innych nicieni. U innych gatunków grzybów to konidia, a nie zarodniki, napotykają nicienie i infekują je w podobny sposób[12].

Wykorzystanie grzybów nicieniobójczych

Niektóre nicienie to groźne szkodniki wielu roślin uprawnych, powodujące duże straty w plonach, zarówno wskutek żerowania na uprawianych roślinach, jak i pośrednio – są wektorami przenoszącymi wiele wirusowych chorób roślin. Poczyniono wiele badań nad wykorzystaniem tych grzybów do zwalczania nicieni. Na przykład grzyb Purpureocilium lilacinum poraża pasożytniczego nicienia Meloidogyne incognita, który atakuje korzenie wielu roślin uprawnych. W laboratoriach próby z niektórymi szczepami tego grzyba wydawały się obiecujące, w terenie jednak okazały się nieskuteczne[13]. Obiecujące wyniki daje wykorzystanie grzyba Arthrobotrys dactyloides do zwalczania na roślinach nicienia Meloidogyne javanica[3].

Grzyby nicieniobójcze mogą być wykorzystane także do zwalczania żyjących wolno stadiów nicieni. W tym przypadku ich zarodniki rozsiewa się na pastwiskach lub dodaje do paszy, aby po przejściu przez przewód pokarmowy zapasożyconych zwierząt kiełkowały w ich kale. Rozsianie zarodników grzybów nicieniobójczych na pastwisku, celem ograniczenia liczebności larw nicieni pasożytujących na jagniętach zaproponowano już w 1941. Próby doświadczalne zakończyły się sukcesem[4].

Wyjątkowo zdarza się, że grzyby pasożytujące na nicieniach atakują również inne wylinkowce[14], natomiast niektóre grzyby drapieżne są polifagiczne[6].

Przypisy

  1. a b c d R. Greg Thorn i inni, Phylogenetic Analyses and the Distribution of Nematophagy Support a Monophyletic Pleurotaceae within the Polyphyletic Pleurotoid-Lentinoid Fungi, „Mycologia”, 92 (2), 2000, s. 241–252, DOI10.2307/3761557, JSTOR3761557 (ang.).
  2. Birgit Nordbring-Hertz, Hans-Börje Jansson, Anders Tunlid, Nematophagous fungi, Encyclopedia of Life Sciences, 2011, DOI10.1002/9780470015902.a0000374.pub3 (ang.).
  3. a b Ke-Quin Zhang, Nematode trapping fungi, Kevin D. Hyde (red.), Springer, s. 1–383, ISBN 978-94-017-8730-7 [dostęp 2023-10-09] (ang.).
  4. a b Maria Czygier, Mieczysława I. Boguś, Drapieżne grzyby nicieniobójcze, „Wiadomości Parazytologiczne”, 47 (1), 2001, s. 25–31.
  5. a b Luis V. Lopez-Llorca i inni, Nematophagous Fungi as Root Endophytes [online], Microbial Root Endophytes, s. 91–206 [dostęp 2023-10-09].
  6. a b Piotr Panek, Trują i duszą, czyli jak grzyby walczą o lepsze życie [online], Pulsar, 19 lutego 2023.
  7. Molecular genetics of host-specific toxins in plant disease, [w:] N.P. Money, Mechanics of invasive fungal growth and the significance of turgor in plant infection, Kluwer Academic Publishers, 1998, s. 261–71.
  8. Yen-Ping Hsueh i inni, Nematophagous fungus Arthrobotrys oligospora mimics olfactory cues of sex and food to lure its nematode pre, e-life, 2017, DOI10.7554/eLife.20023.
  9. Till R.Lohmeyer, Ute Kũnkele, Grzyby. Rozpoznawanie i zbieranie, Warszawa 2006, ISBN 83-85444-65-3.
  10. Antagonista Effect of Some Species of Pleurotus on the Root-knot Nematode, Meloidogyne javanica in vitro, scialert.net, DOI10.3923/ppj.2006.173.177 [dostęp 2023-10-12] (ang.).
  11. S.S. Tzean, J.Y. Liou, Nematophagous resupinate Basidiomycetous Fungi, „Phytopathology”, 83, 1993, s. 1015–1020.
  12. Nematopathogenous Fungi. Part I [online], World News [dostęp 2023-10-09].
  13. P. Jatala, Biological control of plant-parasitic nematodes, „Annual Review of Phytopathology”, 24, 1986, s. 453–89, DOI10.1146/annurev.py.24.090186.002321.
  14. Marta Wrzosek, Grzyby (Fungi) i wylinkowce (Ecdysozoa) – zróżnicowanie i plastyczność interakcji. Autoreferat habilitacyjny [online], Wydział Biologii Uniwersytetu Warszawskiego, 2017, s. 7.