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INTRODUCCIÓN.
l avance y sofisticación de las
técnicas en biología molecular ha
permitido uno de los grandes
hitos de la ciencia moderna: la posibilidad de recuperar material genético de restos biológicos antiguos. Las
posibilidades que esta nueva disciplina -a la que denominamos "paleogenética"- ofrece son múltiples:
caracterización genética de nuestros
antepasados próximos, análisis del
material genético de especies extintas para tratar de esclarecer su
relación con otras actuales -por
ejemplo, los Neandertales- o el
seguimiento de migraciones históricas o prehistóricas.
Figura 2.
Dóble hélice
de ADN.
E
Fernández
Domínguez E.
Turbón D.
Pérez-Pérez A.
Arroyo-Pardo E.1
Unidad de Antropología
Departamento de Biología Animal
Facultad de Ciencias Biológicas
Avda. Diagonal 645
08028-Barcelona.
1
Laboratorio de Biología Forense
Toda la tecnología empleada en el
Departamento de Toxicología y
estudio de biomoléculas antiguas
Legislación Sanitaria
tiene una base teórica y fisicoquímiFacultad
de Medicina
ca de gran importancia. Los orígenes
Universidad Complutense de Madrid
de esta nueva disciplina cabe bus28040-Madrid
carlos a mediados de los años 80
E-mail:
[email protected]
con el trabajo pionero de Higuchi y
colaboradores.1 Gracias a este
equipo se obtuvo por vez primera ADN de una especie
extinta: el cuagga (Equus quagga), un équido de África
del Sur que se extinguió hace aproximadamente 140
años. Desde entonces se ha conseguido aislar ADN de
restos de una gran variedad de especies vegetales y
animales, incluido el hombre (ver figuras 1 y 2).2-4
Desgraciadamente, este entusiasmo inicial se trocó al
poco tiempo en escepticismo al ser puesta en duda la
Figura 1.
Esquema de la
situación del
ADN dentro
del núcleo
celular.
autenticidad de algunos de los resultados obtenidos. Algunos investigadores creyeron que las secuencias de ADN presuntamente
antiguas no eran sino ADN moderno
introducido en la muestra por fallos
de procedimiento; es decir, lo que los
especialistas denominan "contaminaciones".5-7 Con la llegada de la
Reacción en Cadena de la
Polimerasa (PCR)8,9 -y en parte con
la secuenciación automática- la tecnología del ADN antiguo (ADNa) ha
sufrido una auténtica revolución (ver
figura 3). La PCR ha hecho posible
Figura 3. Esquema de la Reacción en Cadena de la
Polimerasa (PCR). El proceso iterativo (ciclos) aumenta
el número de copias de ADN.
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la obtención de información genética a partir de cantidades ínfimas y muy fragmentadas de ADN y el uso de
secuenciadores automáticos ha permitido analizar de
forma rápida la variabilidad de las secuencias, para
comparar muestras antiguas con modernas, e inferir así
conclusiones filogenéticas.
más satisfactorios (ver figura 4).13 Particularmente los
dientes constituyen un depósito natural de ácidos nucleicos notablemente protegido de factores medioambientales.6
En general, hay que abordar tres problemas clave para
garantizar el éxito en la recuperación de ADNa:
a) La presencia de inhibidores de la Taq polimerasa,
derivados del suelo en que se ha conservado el resto o
de procesos bioquímicos degradativos acontecidos tras
la muerte del individuo.
b) El aislamiento de ADN "template" auténticamente
antiguo, libre de ADN exógeno moderno.
c) El daño molecular ocasionado en el ADN antiguo
recuperado.
28
Desde que aparecieron las primeras publicaciones
sobre ADNa a mediados de los años 80, estos tres puntos han sido objeto de controversia. Los trabajos iniciales de Höss y Pääbo10 y de Tuross11 no sólo permitieron en su momento profundizar en los fundamentos
moleculares de estas dificultades sino que sentaron las
bases para un estudio más profundo del ADNa, que
excedía con mucho la mera recuperación de fragmentos mediante PCR. De hecho, fueron ellos los que
establecieron que la extracción y amplificación del ADN
antiguo se complica por todos aquellos mecanismos de
descomposición que acompañan a las muestras enterradas o suficientemente antiguas. Como demostraron
aquellos trabajos pioneros, el ADN se comporta como
otras moléculas que, tras la muerte del individuo, pasan
de la biosfera a la geosfera.12 Desgraciadamente, este
enfoque sólo se abordó decididamente a mediados de
los años 90.
Por último, a juicio de algunos autores5, a los resultados
obtenidos a partir de restos no humanos, se les debe
pedir un cierto "sentido filogenético"; es decir, que su
amplificación produzca resultados no humanos y que,
además, esté de acuerdo con la información filogenética disponible para la especie en cuestión. Este criterio
-en parte discutible- no puede aplicarse con el mismo
rigor al caso de los restos humanos; pero debe subrayarse en todos los demás aspectos el procedimiento
metodológico es, salvo excepciones, el mismo en
humanos que en otros organismos vivos. A lo largo del
presente trabajo revisaremos las cuestiones más candentes desde los inicios de la bioquímica del ADN
antiguo hasta el presente.
Figura 4. Imagen de un insecto encerrada en ámbar. La
posibilidad de recuperar ADN de este tipo de fósiles ha sido
objeto de mucha controversia.
Tras la muerte de un organismo su ADN es rápidamente
degradado por nucleasas endógenas. Ciertas condiciones pueden ralentizar e incluso detener este proceso, como una rápida deshidratación que impida la
actuación de microorganismos, la presencia de elevadas concentraciones de sales o las altas temperaturas (ver figuras 5 y 6). Una vez esta actividad
endonucleásica ha cesado, hongos y bacterias colonizadoras continúan el proceso degradativo. Tras la
acción de estos microorganismos el ADN todavía queda
a merced de procesos de degradación química mediante reacciones de hidrólisis y oxidación.
Figura 5. Los individuos momificados pueden ser objeto de
toma de muestras para estudios de ADN antiguo.
1.- DAÑO Y DEGRADACIÓN DEL ADN ANTIGUO
El material de partida para los estudios de ADN antiguo
es variado, normalmente restos de tejidos blandos (por
ejemplo, piel y músculo) o huesos y dientes, siendo
estos dos últimos materiales los que ofrecen resultados
ADN ANTIGUO: QUÍMICA Y APLICACIONES
Figura 6. Yacimiento neolítico de Tell Halula (Siria). Las
condiciones climáticas favorecen una rápida evaporación del
agua, una elevada tasa de racemización y una preservación
de ácidos nucleicos.
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Como consecuencia de estos procesos el material
genético preservado en restos antiguos presenta un
conjunto de características que lo diferencian del ADN
de organismos actuales (ADN fresco) y que impone un
conjunto de limitaciones a su recuperación (ver figura
7).
Figura 8. Posibles sitios moleculares susceptibles de daño
molecular.
Figura 7. Corte
esquemático de
un diente. El
interior de la
cámara pulpar
retiene gran
cantidad de
ADN postmortem.
En primer lugar, el ADN antiguo está sumamente fragmentado. Algunos autores mantienen que no es posible
la amplificación por PCR de fragmentos de ADN de
tamaño superior a 150 pares de bases (bp) en tejidos
blandos.3 Este límite es sensiblemente superior en tejidos sólidos como hueso o diente, siendo de 300 pares
de bases (bp) para ADN mitocondrial y de poco más de
100 bp para material nuclear.14,15 La longitud del fragmento a amplificar guarda una relación inversamente
proporcional con la cantidad de producto obtenido tras
la amplificación.16 Sin embargo no parece existir una
correlación entre la antigüedad de la muestra y su
grado de fragmentación.3 Esto se debe a que la
degradación del ADN depende más de las condiciones
medioambientales en sí, que del tiempo que éste ha
estado expuesto a ellas. Así, aunque la cantidad total de
ADN antiguo presente en la muestra sea en principio
suficiente para garantizar su recuperación mediante
una PCR exitosa, la fragmentación de este material
hace que sólo sean recuperables aquellos fragmentos
más pequeños.
En la estructura del ADN existen dos lugares especialmente sensibles a la hidrólisis: los enlaces fosfodiéster,
que unen las diferentes desoxirribosas entre sí, y los
enlaces glicosídicos, que conectan éstas a las bases
nitrogenadas (ver figura 8). La rotura de los enlaces
fosfodiéster rompe la cadena de ADN y la de los
enlaces glicosídicos suele provocar la pérdida de la
base nitrogenada correspondiente formándose sitios
apurínicos (AP sites) o sin base (baseless) en un proceso conocido como depurinización o depirimidinación.
Este proceso tiene lugar "in vivo" aproximadamente
cada 10 horas, aunque puede verse acelerado por factores como la temperatura, la fuerza iónica del entorno,
el pH o la presencia de metales pesados. Tras la producción de un sitio apurínico, puede tener lugar la rotura, conocida como β-eliminación, de la cadena de ADN
en ese punto.
Además del daño hidrolítico, el ADN está sometido a
alteraciones de carácter oxidativo durante el proceso de
descomposición. Este daño se da bien por efecto de
una radiación ionizante directa sobre el ADN, bien por la
acción de radicales libres, generalmente del tipo
superóxido (O2+), peróxido de hidrógeno (H2O2) e
hidroxilo (OH-), o bien por otras especies reactivas
como el electrón hidratado (eaq-) y los protones (H+).
Todos estos compuestos, esencialmente subproductos
de reacciones celulares endógenas, también pueden
ser generados tras la exposición de la célula a radiaciones ionizantes, luz ultravioleta o ser el resultado de
degradación bacteriana y/o fúngica. Algunas de estas
especies pueden reaccionar con las bases nitrogenadas del ADN modificándolas, como sucede con los
electrones hidratados y los protones producidos por
radiación ionizante en solución acuosa.17,18 Otras en
cambio, como el radical superóxido (O2- ) y el peróxido
de hidrógeno (H2O2) no producen daño directo en el
ADN salvo cuando son convertidos en OH-.19 Como
ejemplo de daño molecular fisiológico, se ha comprobado in vivo que los radicales hidroxilo pueden modificar
las proteínas asociadas al ADN originando enlaces
covalentes ADN-proteína (DPCs: ADNprotein crosslinks). También puede suceder que el radical hidroxilo
arranque un protón del grupo metilo de la timina.17
Además, la presencia de iones hierro, cobre y otros
compuestos, sobre todo cuando estos iones no están
quelados, facilita la formación de radicales hidroxilo a
partir de O2- y H2O2 que producen un daño extensivo
en el ADN.20
La adición de estas especies reactivas a los dobles
enlaces de la molécula de ADN se traduce en la formación de aductos con capacidad de bloquear la PCR,
haciendo que aunque se obtenga ADN endógeno, éste
sea inservible.
Tras analizar diversos extractos de ADN de tejidos de
diferentes épocas mediante Cromatografía de Gases /
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Espectrometría de Masas (GC/MS) se comprobó que
un gran porcentaje de las bases nitrogenadas estaba
modificado.21 La 5-OH-5-Metil Hidantoína es uno de los
productos mayoritarios resultantes de la degradación de
la timina en ADN expuesto a radiaciones γ, mientras
que la 8-OH-Guanina se genera tras el ataque de radicales hidroxilo. La cantidad de los dos primeros tipos de
modificaciones en los extractos de ADN guarda una
relación inversa con la eficiencia de su amplificación,
probablemente causada por el bloqueo que provocan
estos productos en la PCR.
Tabla 1. Comparación de tres protocolos para la extracción
de ADNa.
El radical hidroxilo reacciona con la mayoría del ADN
por adición a los dobles enlaces de las bases; sin
embargo, una pequeña cantidad también reacciona con
el esqueleto de azúcar arrancando un protón y originando radicales de azúcares.17 Estos azúcares dañados pueden encontrarse en forma libre o unidos todavía
al ADN.22,23
2.- AISLAMIENTO
CONTAMINACIÓN
DEL
ADN
ANTIGUO
Y
Otra de las dificultades del aislamiento del ADN antiguo
es la posibilidad de contaminación con ADN moderno,
de manera que se amplifique éste en vez de aquél.24
Desde los inicios de la disciplina del ADN antiguo se ha
propuesto un conjunto de criterios para tratar de controlar esta contaminación exógena.
30
Primero se propuso una esterilización extensiva de las
áreas de trabajo con HCl seguida de su exposición a luz
UV. Con el HCl se buscaba producir la hidrolisis ácida
del ADN y con la radiación UV, la formación de aductos
covalentes no válidos para la reacción de PCR. El siguiente paso, la delimitación de áreas de trabajo -la
separación de las áreas de extracción de ADN respecto de las de amplificación del ADN- pretendía anular la
posibilidad de carry-over, término mediante el cual se
designa el arrastre de moléculas de ADN provenientes
de amplificaciones anteriores.25 Además, se impuso el
uso de campanas de flujo laminar o de seguridad
biológica, instrumentos imprescindibles que impedían la
contaminación de las muestras en el área de trabajo.
Todas estas medidas de seguridad "clásicas" siguen
todavía hoy vigentes, si bien durante los últimos años
otras nuevas han venido a sumarse.
Con motivo de la polémica suscitada acerca de la amplificación real de ADN antiguo, Béraud-Colomb y colaboradores26 describieron detalladamente en 1995 las
precauciones que debían tomarse para minimizar la
contaminación potencial de ADN moderno exógeno,
añadiendo ocho medidas de seguridad adicionales a las
preexistentes (ver tabla 1). La novedad de sus propuestas radicaba en un exhaustivo control de los reactivos así como el empleo sistemático de controles en
la reacción de PCR.
Tras la secuenciación en 1997 de la región D-loop del
ADN mitocondrial de un resto neandertal por el equipo
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de Svante Pääbo9, Ward y Stringer introdujeron cuatro
puntos adicionales para la recuperación fiable de este
tipo de material genético en restos antiguos.27 Su propuesta incorporaba parámetros bioquímicos como
medida indirecta de la degradación del ADN tales como
la racemización de aminoácidos,28 además de la estima
del número de moléculas "template" intactas. Según
estos autores si la amplificación se inicia a partir de un
número demasiado bajo de estas moléculas, se producen resultados inconsistentes y poco fiables.
Tradicionalmente esta determinación se ha venido
haciendo por "PCR competitiva", pero actualmente este
método está siendo desplazado por la PCR en tiempo
real o Real Time PCR (RT-PCR), mucho más sensible y
específico.
Otro punto novedoso del protocolo de Ward y Stringer
consiste en la clonación de los productos amplificados.
Esta técnica permite separar las diferentes moléculas
de cada producto final de amplificación, resultando útil
para detectar ADN contaminante y posibles errores de
la Taq polimerasa introducidos durante el proceso de
amplificación.
Por último, los dos autores consideraban necesario
repetir las amplificaciones, para confirmar los resultados. El último de estos criterios, introducido a raíz del
trabajo de Krings et al 29 implica la replicación del proceso de extracción y amplificación en dos laboratorios
independientes. De esta forma puede conseguirse
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monitorizar la contaminación introducida por los investigadores directamente implicados en el análisis de las
muestras, así como el ya mencionado carry over inherente a cada laboratorio.
3.- INHIBIDORES DE LA REACCIÓN DE PCR:
La co-purificación junto con el ADN procedente de tejidos blandos, huesos y dientes de otras sustancias fue
observada ya en los primeros estudios de ADN
antiguo.2,3,30,31 Posteriormente, con la generalización
del uso de la PCR en el campo del ADNa, se relacionó
esta observación inicial con la presencia, en algunos de
estos extractos, de sustancias inhibidoras de esta reacción.
Los mecanismos de acción de estas moléculas
inhibidoras continúan siendo un misterio, pero existe un
conjunto de observaciones empíricas que ofrecen
interesantes pistas al respecto.
Por ejemplo, la inhibición aparece en diferentes extractos de diferente procedencia y el patrón de absorción de
luz de ciertos extractos con poder inhibidor difiere de
aquellos que no tienen este poder. Muchos extractos
con capacidad inhibidora presentan una coloración
marrón y, en algunos casos, al visualizar una alícuota
de los mismos en un gel de electroforesis se ha observado la emisión de fluorescencia. El protocolo de
extracción convencional de ADN (método FenolCloroformo) no consigue eliminar estas moléculas
inhibidoras. Además éstas son retenidas por el filtro de
30000 daltons utilizado para concentrar el ADN en el
paso final de extracción.
En todo caso existen estrategias para eliminar o atenuar la inhibición, bien aumentando la pureza del ADN
extraído, bien tratando de contrarrestar el efecto
inhibidor durante la propia reacción de amplificación. La
mayor parte de estas medidas resultan en un incremento del riesgo de contaminación con ADN exógeno
de la muestra, pues aumentan la manipulación por
parte del investigador. Sin embargo existen otras que
producen mejoras sustanciales en la amplificación y
que no presentan este inconveniente, como es el almacenamiento de los extractos en frío durante varios días
previamente a su amplificación. Este procedimiento
provoca la formación de un precipitado blanquecino que
queda adherido a la pared del tubo y cuya eliminación
por precipitación consigue revertir la capacidad de
amplificación.32,33
La naturaleza del inhibidor está todavía por determinar,
aunque se han propuesto un conjunto de moléculas
candidatas, básicamente compuestos del suelo o productos de degradación del organismo. A continuación
se citan los más importantes.
Ácidos húmicos y fúlvicos
La posible acción inhibidora de los ácidos húmicos y
fúlvicos sobre las enzimas de biología molecular fue
señalada por vez primera por Svante Pääbo.3 Los ácidos húmicos y fúlvicos son una familia de moléculas
muy abundantes en el suelo, que pueden acompañar al
ADN en el proceso de purificación y que son inhibidores
muy potentes de la reacción de PCR (ver figuras 9 y
10). Tan solo 100 ngr. de ácido fúlvico son suficientes
para la inhibición total de una amplificación control de
fago λ.11 Las propiedades fluorescentes de esta familia
de compuestos se han relacionado con la fluorescencia
observada en agarosa de algunos de los extractos de
ADN antiguo.
Residuos de porfirinas o productos derivados de su
degradación:
Los derivados de la porfirina o sus productos de
degradación han sido señalados como tales inhibidores
por algunos autores durante los años 90.32,33 La acción
inhibidora de estas moléculas se debe a su capacidad
para secuestrar iones metálicos, necesarios para el funcionamiento de polimerasas, gracias a estructuras similares al grupo hemo. Las porfirinas se encuentran
presentes en sangre, tejidos blandos y en hojas vegetales, y constituyen una familia molecular que puede
considerarse como derivada de un compuesto tetrapirrólico original: la porfina. Las porfirinas más abundantes son las protoporfirinas y aunque pueden
describirse quince protoporfirinas isómeras, solo una
Figura 10. Estructura química del ácido húmico.
Figuras 9 . Estructura química del ácido fúlvico.
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forma, la protoporfirina IX, está presente en la naturaleza.
La protoporfirina IX forma complejos quelatos tetradentados con iones diversos (hierro, zinc, níquel, cobalto,
etc) y también con iones magnesio, en los que el metal
se une por enlaces coordinados a los 4 nitrógenos de
los anillos pirrólicos. La capacidad de la protoporfirina
IX para quelar iones magnesio, necesarios para el funcionamiento de la Taq polimerasa, hace que este tipo
de compuestos presente un poder inhibidor de la reacción de PCR potencial.1 Además, los derivados porfirínicos tienden a formar agregados que quedan así
retenidos junto al ADN en la membrana de muchos procedimientos de filtrado, como el Centriplus 30000,
empleados durante la extracción de ADN antiguo.
Productos de Maillard
32
La reacción de Maillard es sobradamente conocida en
el campo de la tecnología de los alimentos desde mediados de los años 60. Consiste en la reacción de un
grupo carbonilo con un grupo amino para dar una serie
de intermediarios como compuestos carbonílicos (cadenas carbonílicas) y deoxiosonas, estos últimos cuando
hay azúcares implicados en la reacción. Aunque los
productos de Maillard son muchos y variados -desde
grupos carbonilo unidos a cadenas cortas de carbono
hasta heterociclos como furanos y pirroles- el producto
final de la reacción son las melanoidinas, cuya estructura es en buena parte desconocida. Su coloración marrón y su elevado peso molecular -hasta 100.000 daltons- ha sido relacionada por muchos autores con la
capacidad inhibidora de algunos extractos de ADNa.3,4
Los productos de Maillard pueden tener numerosos grupos reactivos, entre los que se cuentan los grupos
hidroxilo, carbonilo y metilo que pueden reaccionar con
el ADN.
El propio daño molecular en el ADN puede inducir la
producción de reacciones de Maillard, puesto que las
pentosas liberadas tras la ruptura de sus enlaces fosfodiéster y N-glicosídico constituyen también un sustrato para esta reacción.
Productos de degradación del ADN
La degradación del material genético, sea por rotura de
sus enlaces o por modificaciones químicas tales como
la reducción de azúcares, genera ciertos productos
capaces de inducir la inhibición directa de su propia
amplificación.34-36
No hay que confundir sin embargo el poder inhibidor de
un extracto de ADNa con la imposibilidad de su amplificación. El daño extensivo en el ADN (por fragmentación, por modificación de sus bases...) hace inviable su amplificación. Sin embargo a menos que éste
genere productos capaces de interferir en la reacción
de amplificación no podrá hablarse de inhibición sensu
strictu.
ADN ANTIGUO: QUÍMICA Y APLICACIONES
Algunos autores han estudiado el efecto del daño postmortem en los resultados de secuencias de ADNa y han
podido detectar directamente transiciones denominadas de "tipo 1" (A->G ó T->C) y de "tipo 2" (C->T ó G>A) que pueden enmascarar como mutaciones lo que
no es más que un daño molecular.37 Por este motivo,
dado que una reducción de 20ºC en la temperatura
implica una disminución de entre 10 y 25 veces en la
tasa de reacciones químicas, la congelación de muestras puede ser un factor determinante a la hora de
preservar un ADN durante largo tiempo. Así, para muestras de gran antigüedad, en el período comprendido
entre 40000 y 50000 años, la baja temperatura parece
ser de gran importancia para la ralentización de los procesos responsables de la degradación de los ácidos
nucleicos durante el período postmortem.21
4.- ESTEREOQUÍMICA DE AMINOACIDOS Y ADN
ANTIGUO:
Todos los aminoácidos a excepción de la Glicina
pueden presentarse en dos formas isoméricas -L y Dpero en la biosíntesis proteica únicamente son utilizadas las formas L. Cuando un organismo muere sus
aminoácidos sufren un proceso de racemización38 cuya
tasa difiere para cada aminoácido y a su vez, depende
de factores tales como la presencia de agua, la temperatura, el pH y la quelación de ciertos iones metálicos a
las proteínas. Muchos de estos factores afectan también a la principal reacción hidrolítica responsable de la
degradación espontánea del ADN, la depurinización.
Por esta razón, se ha considerado el estudio de la
racemización de los aminoácidos como un método útil a
la hora de estimar la probabilidad de recuperar información genética fiable de un resto antiguo. En 1975,
Helfman y Bada28 observaron que durante el envejecimiento se va produciendo una racemización gradual
del ácido aspártico, en la dentina y en el esmalte dentario, de forma que el incremento de la concentración de
D-aspártico es dependiente de la edad con una tasa de
transformación del 0,1% al año.39 A partir de estos hallazgos, han sido muchos los equipos de investigación
que han utilizado la racemización de este aminoácido
para estimar la edad de un resto cadavérico.34,40 Así, se
ha medido la racemización en tejidos con una baja tasa
de "turn-over" proteico, tales como sustancia blanca del
cerebro40, discos intervertebrales41, fibras elásticas del
parénquima pulmonar42, cristalino ocular43 y hueso.44
Teniendo en cuenta que la racemización de los aminoácidos sigue una ley de tasa reversible de primer orden,
la reacción de la racemización es:
donde D/L es la relación de formas D y L y t es el tiempo. El término logarítmico t=0 describe la cantidad de
ácido D-aspártico formado mediante el procedimiento
de hidrólisis con HCl 6 M a 100ºC durante 6 horas y K
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expresa la tasa de racemización.
Mediante esta ecuación se ha podido observar que la
tasa de racemización es de 5,3 x 10-3 para la fracción
peptídica ácido-soluble de la dentina45,46; de 3,1 x 10-3
para el cartílago39, y de solo 1,8 x 10-3 para la correspondiente fracción de hueso. En la fracción de colágeno
ácido-insoluble de la dentina es de 1,0 x 10-3 y de 3,3 x
10-3 en cartílago47,48, con un valor para hueso de solo
0,47 x 10-3.49 No parece muy fácil explicar el porqué la
tasa de racemización difiere entre las dos fracciones de
hueso y no de cartílago. La diferencia entre los dos
compartimentos de la dentina es más sencilla de
explicar dado que el colágeno en este tejido no está
sujeto a ninguna remodelación, mientras que la fracción
peptídica ácido-soluble puede tener intercambio nutricional con la circulación a través de los túbulos y peritúbulos de dentina (ver figura 11).
Figura 11. Toma
de muestra de
dentina para su
posterior empleo
en análisis de
aminoácidos. Se
trabaja en entorno
estéril con un taladro.
aquellas muestras antiguas que no contienen ADN
antiguo endógeno y amplificable de una forma rápida y
sin necesidad de destruirlas totalmente. Sin embargo, al
carecer el método de Poinar y colaboradores de una
estandarización en cuanto al tipo de tejido estudiado,
cabría plantearse si los valores de racemización propuestos son extrapolables a otros estudios de ADN
antiguo realizados con un material diferente.
5.- REAL TIME-PCR y ADN ANTIGUO.
Los procedimientos de Real Time PCR (RT-PCR) han
desplazado hoy en día a otras técnicas para la cuantificación de ADN. Debido a su sensibilidad y especificidad
su uso se ha incorporado rápidamente en el campo del
ADNa.
La variante más famosa de esta técnica necesita de un
par de primers o cebadores e incorpora además una
sonda marcada (sonda TaqMan) complementaria a la
región de ADN que se quiere amplificar. Los pasos del
proceso pueden verse en la figura 12. La sonda en
cuestión presenta un reporter fluorescente (TAMRA) en
un extremo y un quencher no fluorescente en el otro,
que absorbe la fluorescencia emitida por el reporter
cuando ambos están unidos a la sonda.
33
Una de las explicaciones para justificar que la correlación entre D/L y la edad sea menor en hueso que
en dentina o en cartílago, es la elevada remodelación
del primero o que pueda existir contaminación con proteínas de otras fuentes como tejido conectivo y sangre
que pueden incrementar de forma significativa la cantidad de forma L.
También se ha estudiado el grado de racemización de
otros aminoácidos como alanina y leucina, pero el ácido
aspártico tiene la ventaja de que tiene una alta energía
de activación y su tasa de racemización es una de las
más rápidas y es constante en un amplio rango de temperatura (a pH neutro).
Según parece, los factores que influyen en el proceso
de racemización son también responsables de la
degradación del ADN.38 Tras estudiar el grado de
racemización de muestras de diferentes organismos y
épocas, Poinar y colaboradores establecieron que para
relaciones D/L Aspártico mayores de 0.08 no era posible obtener una secuencia fiable de ADN. Parecía existir además una relación clara entre la amplitud de este
aminoácido y la longitud de secuencia de ADN que
podía recuperarse: en muestras con una D/L igual a
0.05 se obtenían secuencias de entre 140 y 340 pares
de bases, mientras que en aquellas con una tasa de
racemización mayor tan sólo era posible amplificar fragmentos más cortos.49
La ventaja de este método es que permite identificar
Figura 12. Esquema de la PCR en tiempo real o “Real
Time PCR”.
Si la secuencia blanco está presente, la sonda hibrida
con ella y se inicia la elongación a partir del extremo 3'
del primer forward, como en una reacción normal de
PCR. Ahora bien, cuando la cadena en elongación,
junto con la polimerasa, alcanza el extremo 5' de la
sonda, ésta es degradada por la actividad 5' exonucleasa que presenta la polimerasa. El resultado es que
el quencher es separado del reporter de manera que la
señal del reporter se ve considerablemente aumentada.
El número de moléculas iniciales de ADN es proporcional a la intensidad de fluorescencia emitida.
ADN ANTIGUO: QUÍMICA Y APLICACIONES
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Midiendo esta fluorescencia puede estimarse la concentración de un ADN problema comparándola con
unos patrones de concentraciones conocidas.
Recientemente la casa comercial Applied Biosystems
ha comercializado una nueva modalidad de sondas,
denominadas TaqMan MGB (Minor Groove Binding),
que presentan la particularidad que se unen al surco
pequeño de la doble hélice de ADN y aumentan así la
temperatura de desnaturalización Tm, permitiendo el
uso de sondas con menos pares de bases.
La ventaja de este procedimiento es que permite cuantificar una secuencia de ADN específica y no la cantidad
total de ADN, tal y como sucede con otras técnicas
como la espectrofotometría. Además, marcando diferentes sondas con diferentes fluorocromos pueden
cuantificarse distintas secuencias a la vez. La principal
desventaja es que este método requiere una sonda
diferente para cada secuencia a cuantificar, lo que suele
encarecer bastante el proceso. Un ejemplo de RT-PCR
puede verse en la figura 13.
Figura 14. Estructura genética del ADN mitocondrial.
34
Figura 15.
Retrato de la
familia imperial
Zarista. El misterioso destino
de la princesa
Anastasia solo
pudo resolverse por el
estudio del
ADN de sus
restos.
Figura 13. Ejemplo de un resultado de RT-PCR producido
por un extracto de ADN procedente del yacimiento neolítico
de Tel-Hallula (Siria), con una antigüedad aproximada de
unos 10.000 años. Los colores verde y rojo corresponden a
dos réplicas de la misma muestra que aparecen casi superpuestas. Como se ve, a partir de los 33 ciclos de PCR -eje
de abcisas- la fluorescencia crece exponencialmente
(Imagen de los autores).
6.- ALGUNOS EJEMPLOS DE ANÁLISIS DE ADNa:
Identificación del Duque de Widukind:
El duque de Widukind vivió en el siglo VIII y fue el jefe
de los sajones que combatió por la fuerza de las armas,
durante 7 años, la cristianización y el imperio franco de
Carlomagno, antes de bautizarse finalmente en 785.
Tras su muerte, acaecida entre el 900 y el 910 d.C., su
cuerpo fue enterrado en la Iglesia de Enger, en
Westfalia (Alemania). El estudio realizado en su sepultura encontró, junto al supuesto esqueleto de Widukind,
el de otros dos individuos de origen desconocido.50 Las
condiciones de enterramiento hicieron posible la recuperación de secuencias de ADN mitocondrial de los tres
individuos (ver figura 14). Dos de ellos poseían las
mismas mutaciones mitocondriales indicando la posible
relación por vía materna, ya que el ADN mitocondrial se
hereda solo matrilinealmente, mientras que el tercero
difería en una única mutación de los otros dos. A fecha
de hoy, el estudio molecular de los restos de la iglesia
de Enger continúa realizándose en la Universidad de
ADN ANTIGUO: QUÍMICA Y APLICACIONES
Göttingen (Alemania) y, de momento, nada ha podido
concluirse acerca de la identidad de los tres individuos
estudiados.
La identificación de los Romanov:
Durante el golpe de estado bolchevique en la Rusia de
1917, la familia imperial zarista fue apresada por los
insurgentes. El Zar Nicolás II, la Zarina Alejandra y sus
cinco hijos, Olga, Tatiana, María, Anastasia, y el
Zarevich Nicolás fueron capturados y, el 16 de julio de
1918, asesinados junto a dos sirvientes y al doctor
Botkin, médico de la familia, en la casa Ipatiev, en
Ekaterimburgo (ver figura 15). Los cadáveres fueron
rociados con cal viva y enterrados en una fosa común,
si bien por el relato de los propios asesinos, dos cuerpos fueron enterrados en un lugar diferente (supuestamente los de Anastasia y el Zarevich Nicolás). En 1919
el forense Nicolai Sokolov documentó el hecho pero
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hubo que esperar hasta 1991 en que unos historiadores
amateur descubrieron una fosa común con 9 cuerpos.
En 1992, se inició un estudio genético para tratar de
aclarar la procedencia de los restos. Se estudiaron
diferentes marcadores genéticos: ADN mitocondrial,
secuencias cromosómicas de microsatélites y ADN de
cromosomas sexuales (gen de la amelogenina). Este
último tipo, utilizado comúnmente para asignar molecularmente el sexo a una muestra, permitió saber que se
trataba de 4 restos de varón y 5 de mujer, tal y como
establecía el registro histórico. El estudio de los
microsatélites de ADN demostró que los esqueletos 4 y
7 eran padres de 3, 5 y 6. Los restos 1, 8 y 9, al no estar
relacionados, podrían ser los sirvientes. Para saber si
los individuos estudiados eran o no los Romanov se
recurrió a comparar su ADN con el de descendientes
actuales vivos por línea materna. El príncipe Felipe de
Inglaterra, actual duque de Edimburgo, al estar relacionado por vía materna con la Zarina Alejandra, debía
compartir con ella su mismo ADN mitocondrial. De la
misma manera, el ADN mitocondrial de los descendientes de Louisse de Hessen-Cassel, emparentados
debía ser idéntico al del Zar Nicolás II (ver figura 16).
1, 8 y 9 eran los sirvientes y el 2 era el Dr. Botkin.51 Este
mismo estudio permitió aclarar el enigma de la supuesta princesa Anastasia -Ana Anderson- que desde 1921
decía ser hija del Zar y que finalmente presentó una
secuencia mitocondrial inconsistente con los restos
encontrados.52 A pesar de todo, esta investigación ha
recibido también críticas.53
El enigma de los neandertales.
Los neandertales (Homo sapiens neanderthalensis)
poblaron Europa y Oriente Próximo entre hace 200.000
y 30.000 años aproximadamente (ver figura 17). En
torno al 40.000-30.000 B.P. comenzó a proliferar y
extenderse una nueva forma humana que los expertos
han pasado a denominar hombre anatómicamente
moderno (Homo sapiens sapiens), debido a su morfología más grácil, semejante a la actual. Durante algún
tiempo ambas subespecies coexistieron hasta que los
neandertales fueron absorbidos o desplazados por los
hombres anatómicamente modernos. Este hecho ha llevado a los paleontólogos a preguntarse hasta qué punto
no hubo hibridación entre ambas formas y si entre
ambos taxa no existió relación filogenética.
Figura 17. Cráneo de Hombre
de Neanderthal. Pese a su
antigüedad (30000-150000
años), este tipo de restos presenta cierto número de copias
integras de ADN.
35
Figura 16. Arbol genealógico de la Zarina Alejandra (a) y
del Zar Nicolás II (b). Los individuos sombreados comparten el mismo ADN mitocondrial (Tomado de Gill et al.
1994, Ref. 51).
En 1997, Mathias Krings, del equipo de Svante Pääbo,
consiguió secuenciar la región de control I (HVR-I) de
un ADN mitocondrial extraído de un húmero derecho del
ejemplar tipo del hombre de Neandertal, encontrado en
la cueva de Feldhofer, en Alemania, cerca de
Düsseldorf, en 1856, y que se conservaba en el
"Rheinisches Landesmuseum" de Bonn.29 Los fósiles
hallados en Feldhofer fueron datados entre 40.000 y
50.000 años. El procedimiento empleado consistió en
amplificar mediante PCR una serie de fragmentos cortos solapantes a partir de 3.5 gr de polvo de hueso. Se
realizó un estudio de racemización de aminoácidos y,
además, cada fragmento amplificado fue clonado hasta
8 veces, estableciéndose una secuencia consenso.
Finalmente, los fragmentos fueron ensamblados hasta
completar la secuencia de la región en cuestión. Este
análisis fue replicado por Mark Stoneking y Anne Stone
en Pennsylvania State University (USA) para monitorizar la posible introducción de ADN exógeno a la muestra.
El resultado de los análisis realizados apoya la hipótesis de que los restos se correspondían con los del
crimen de Ekaterimburgo: los individuos 4 y 7 eran el
Zar y la Zarina respectivamente; 3, 5 y 6 eran sus hijas;
El estudio comparado de la secuencia neandertal
obtenida y un gran número de secuencias humanas
actuales demostró que aquella se situaba totalmente
fuera del rango de variación de estos últimos: la
secuencia neandertal presentó 27 diferencias con
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respecto a una secuencia consenso
de referencia54, mientras que los
humanos actuales difirieron tan solo
en 5-8 posiciones. Posteriormente,
fue secuenciada la región de control
II (HVR-II) del mismo ejemplar tipo e
incluso otros ejemplares de neandertal, que resultaron ser consistentes con la primera secuencia
original.55-57 Krings, Pääbo y cola-
boradores a partir de estos resultados concluyeron de forma explícita
en su artículo que los neandertales
no habían contribuido al "pool"
genético de los humanos actuales,
a pesar de que su trabajo se basaba en una secuencia única. Este trabajo y las conclusiones derivadas
del mismo han sido objeto de
numerosas controversias.58,59
AGRADECIMIENTOS.
Este artículo ha sido parcialmente
financiado
por
el
proyecto
BMC2002-2741 (DT).
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